Морфология и минеральный состав конкреций шишковидной железы у песца Vulpes lagopus L., 1758 (Mammalia: Carnivora)
Аннотация
конкременты), биологическое значение, минеральный и химический состав которых не полностью изучены. Ранее сообщалось о химическом составе, форме, размере и структуре этих биоминералов эпифиза человека и грызунов. Настоящее исследование посвящено морфологии, минеральному и химическому составу кальцинированных конкрементов в шишковидной железе песца Vulpes lagopus L. (Mammalia: Carnivora). Использовали стандартные гистологические методы, а также сканирующую электронную микроскопию в сочетании с энергодисперсионным
детектором и рамановской спектроскопией. Результаты свидетельствуют о том, что процесс минерализации шишковидной железы, скорее всего, не связан с воз-
растом. Наши данные о расположении и минеральном составе конкреций кальция в шишковидной железе песца согласуются с данными, полученными другими исследователями на шишковидной железе грызунов и человека. Кальцинированные конкременты располагались в капсуле, перегородках и паренхиме шишковидной железы. Выделили два морфологических типа конкрементов: виноградоподобные и неправильной удлиненной формы. Конкременты виноградоподобной структуры включали гидроксилапатит и кальцит, а агрегаты неправильной вытянутой формы состояли только из гидроксилапатита. Последний ранее не был обнаружен в кальцинированных конкрециях млекопитающих. Результаты дают первое представление о морфологии, минеральном и химическом составе конкрементов кальция в шишковидной железе песца.
Ключевые слова
Полный текст:
PDF (English)Литература
Admassie D., Mekonnen A. Incidence of normal pineal and choroids plexus calcification on Brain CT (computerized tomography) at Tikur Anbessa Teaching Hospital Addis Ababa, Ethiopia // Ethiopian Med. J. 2009. Vol. 47. P. 55-60.
Baconnier S., Lang S. B. Calcite microcrystals in the pineal gland of the human brain: Second harmonic generators and possible piezoelectric transducers // IEEE Transactions on Dielectrics and Electrical Insulation. 2004. Vol. 11. P. 203-209.
Bocchi G., Valdre G. Physical, chemical, and mineralogical characterization of carbonate-hydroxyapatite concretions of the human pineal gland // J. Inorganic Biochem. 1993. Vol. 49. P. 209-220.
Borell U., Örström Å. The turnover of phosphate in the pineal body compared with that in other parts of the brain // Biochem. J. 1947. Vol. 41. P. 398-403.
Bulc M., Lewczuk B., Prusik M., Gugolek A., Przybylska-Gornowicz B. Calcium concrements in the pineal gland of the Arctic fox (Vulpes lagopus) and their relationship to pinealocytes, glial cells and type I and III collagen fibers // Polish J. Vet. Sci. 2010. Vol. 13. P. 269-278.
Carden A., Morris M. D. Application of vibrational spectroscopy to the study of mineralized tissues (review) // J. Biomed. Optics. 2000. Vol. 5. P. 259–268.
Combes C., Cazalbou S., Rey C. Apatite Biominerals // Minerals. 2016. Vol. 6, no. 2. P. 34.
Frank-Kamenetskaya O., Kol’tsov A., Kuz’mina M., Zorina M., Poritskaya L. Ion substitutions and non-stoichiometry of carbonated apatite-(CaOH) synthesised by precipitation and hydrothermal methods // J. Mol. Structure. 2011. Vol. 992. P. 9-18.
Gilbert P., Abrecht M., Frazer B. H. The organic-mineral interface in biominerals // Reviews in Mineralogy and Geochemistry. 2005. Vol. 59. P. 157-185.
Humbert W., Pévet P. Permeability of the pineal gland of the rat to lanthanum: Significance of dark pinealocytes // J. Pineal Res. 1992. Vol. 12. P. 84–88.
Humbert W., Pévet P. Calcium concretions in the pineal gland of aged rats: an ultrastructural and microanalytical study of their biogenesis // Cell Tissue Res. 1995. Vol. 279. P. 565-573.
Karampas I. A., Kontoyannis C. G. Characterization of calcium phosphates mixtures // Vib. Spectrosc. 2013. Vol. 64. P. 126-133.
Kim J., Kim H. W., Chang S., Kim J. W., Je J. H. Growth patterns for acervuli in human pineal gland // Scientific reports. 2012. Vol. 2. P. 984-988.
Kodaka T., Mori R., Debari K., Yamada M. Scanning electron microscopy and electron probe microanalysis studies of human pineal concretions // Microscopy. 1994. Vol. 43. P. 307-317.
Krstić R. A combined scanning and transmission electron microscopic study and electron probe microanalysis of human pineal acervuli // Cell Tissue Res. 1976. Vol. 174. P. 129-137.
Krstić R. Pineal calcification: its mechanism and significance // J. Neural Transmis. Supplementum. 1986. Vol. 21. P. 415-432.
Krstić R., Golaz J. Ultrastructural and X-ray microprobe comparison of gerbil and human pineal acervuli // Experientia. 1977. Vol. 33. P. 507-508.
Lewinski A., Vaughan M. K., Champney T. H. Dark-exposure increases the number of pineal concretions in male gerbils (Meriones unguiculatus) // IRCS Med. Sci. 1983. Vol. 11. P. 977-978.
Luke J. Fluoride deposition in the aged human pineal gland // Caries Res. 2001. Vol. 35. P. 125-128.
Maślińska D., Laure-Kamionowska M., Deręgowski K., Maśliński S. Association of mast cells with calcification in the human pineal gland // Folia Neuropathologica. 2010. Vol. 48. P. 276-282.
Mori R., Kodaka T., Sano T. Preliminary report on the correlations among pineal concretions, prostatic calculi and age in human adult males // Anat. Sci Int. 2003. Vol. 78. P. 181-184.
Nakamura K. T., Nakahara H., Nakamura M., Tokioka T., Kiyomura H. Ultrastructure and x-ray microanalytical study of human pineal concretions // Ann. Anat. 1995. Vol. 177. P. 413-419.
Pasteris J. D., Yoder C. H., Wopenka B. Molecular water in nominally unhydrated carbonated hydroxylapatite: The key to a better understanding of bone mineral // Am. Miner. 2014. Vol. 99. P. 16-27.
RRUFF database of Raman spectroscopy, X-ray diffraction and chemistry of minerals (Database of Raman spectroscopy, X-ray diffraction and chemistry of minerals (rruff.info))
Schmid H. A. Decreased melatonin biosynthesis, calcium flux, pineal gland calcification and aging: a hypothetical framework // Gerontol. 1993. Vol. 39. P. 189-199.
Tapp E., Huxley M. The histological appearance of the human pineal gland from puberty to old age // J. Pathol. 1972. Vol. 108. P. 137-144.
Thomas D. B., McGoverin C. M., Fordyce R. E., Frew R. D., Gordon K. C. Raman spectroscopy of fossil bioapatite - A proxy for diagenetic alteration of the oxygen isotope composition // Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology. 2011. Vol. 310, no. 1–2. P. 62–70.
Timlin J. A., Carden A., Morris M. D. Chemical microstructure of cortical bone probed by Raman transects // App. Spectr. 1999. Vol. 53. P. 1429–1435.
Tofail S. A. M., Mouras R., McNamara K., Patyk-Kazmierczak E., Geaney H., Zaworotko M., Ryan K. M., Soulimane T., Silien C., Kopáni M. Multimodal surface analyses of chemistry and structure of biominerals in rodent pineal gland concretions // Applied Surface Science. 2019. Vol. 469. P. 378-386.
Turgut A. T., Karakaş H. M., Özsunar Y., Altın L., Çeken K., Alıcıoğlu B., Sönmez İ., Alparslan A., Yürümez B., Çelik T., Kazak E., Geyik P. Ö., Koşar U. Age-related changes in the incidence of pineal gland calcification in Turkey: A prospective multicenter CT study // Pathophysiol. 2008. Vol. 15. P. 41-48.
Vígh B., Vígh-Teichmann I., Heinzeller T., Tutter I. Meningeal calcification of the rat pineal organ // Histochem. 1989. Vol. 91. P. 161-168.
Vígh B., Szél A., Debreceni K., Fejér Z., e Silva M. M., Vígh-Teichmann I. V. Comparative histology of pineal calcification // Histol. Histopathol. 1998. Vol. 13. P. 851-870.
Vollrath L. The pineal organ. In: Oksche A. and Vollrath L. (eds) Handbuch Der Mikroskopischen Anatomie Des Menschen vol 7. Springer, Berlin, Heidelberg, New York. 1981.
Zimmerman R. A., Bilaniuk L. T. Age-related incidence of pineal calcification detected by computed tomography // Radiol. 1982. Vol. 142. P. 659-662.
DOI: http://dx.doi.org/10.17076/them1413
Ссылки
- На текущий момент ссылки отсутствуют.
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
© Труды КарНЦ РАН, 2014-2019