СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ КОМПОНЕНТНОГО СОСТАВА НИЗКОМОЛЕКУЛЯРНОГО МЕТАБОЛОМА ГОРЦА ЗЕМНОВОДНОГО (PERSICARIA AMPHIBIA (L.) DELARBRE) ИЗ РАЗНОТИПНЫХ МЕСТООБИТАНИЙ В ЛАДОЖСКОМ ОЗЕРЕ

Юлия Викторовна Крылова, Евгений Александрович Курашов, Александр Геннадьевич Русанов, Julia Krylova, Evgeny Kurashov, Alexander Rusanov

Аннотация


Впервые проведено хромато-масс-спектрометрическое исследование низкомолекулярного метаболома (НМ) горца земноводного (Persicaria amphibia (L.) Delarbre, семейство Polygonaceae Juss.) в фазе цветения, произрастающего в разнотипных биотопах Ладожского озера, с целью выявления его качественного и количественного состава. Эфирное масло, содержащее низкомолекулярные органические соединения (НОС), получали из высушенных растений методом паровой гидродистилляции с использованием аппарата Клевенджера. Состав и содержание НОС в эфирном масле выявляли при помощи хромато-масс-спектрометрического комплекса TRACE DSQ II (Thermo Electron Corporation) в программированном режиме температур с использованием декафторбензофенона и бензофенона в качестве внутренних стандартов. Всего обнаружено 124 НОС, из которых идентифицировано 110. Среди НОС горца земноводного преобладали карбоновые кислоты (50–60 % по содержанию), альдегиды (9–14 %) и углеводороды (6–9 %). НМ P. amphibia из биотопа, в недавнем прошлом находившегося под сильным антропогенным воздействием (стоки ЦБК и деревообрабатывающих предприятий), характеризовался наименьшим числом НОС (87 против 107 и 114) и их общим содержанием в 3–3,5 раза ниже, чем у растений, произрастающих в более благоприятных условиях. Наличие целого ряда биологически активных метаболитов в составе НМ P. amphibia свидетельствует о выраженном влиянии данного растения на гидробиоценозы литорали Ладоги.


Ключевые слова


Persicaria amphibia; низкомолекулярные органические соединения; низкомолекулярный метаболом; газовая хромато-масс-спектрометрия; Ладожское озеро.

Полный текст:

PDF

Литература


Бушнев Д. А., Валяева О. В., Котик И. С., Бурдельная Н. С., Бурцев И. Н. Состав биомаркеров битумоидов из углей и вмещающих отложений северо–востока Печорского угольного бассейна // Вестник Института геологии Коми научного центра Уральского отделения РАН. 2016. № 6 (258). С. 3–10.

Горец земноводный // Энциклопедия лекарственных растений [Электронный ресурс]. URL: http://medgrasses.ru/gorez_zemnovodny.html (дата обращения: 04.09.2019).

ГОСТ 24027.2–80. Сырье лекарственное растительное. Методы определения влажности, содержания золы, экстрактивных и дубильных веществ, эфирного масла. М.: Издательство стандартов, 1980. 31 с.

Гуревич Ф. А. Роль фитонцидов во внутренних водоемах // Водные ресурсы. 1978. № 2. С. 133–142.

Кашина Л. И., Тупицына Н. Н. Сем. Polygonaceae – гречишные // Флора Сибири. Новосибирск, 1992. Т. 5. С. 106–108.

Крылова Ю. В., Курашов Е. А., Митрукова Г. Г. Компонентный состав летучих низкомолекулярных органических соединений Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae), произрастающего в различных климатических условиях // Вода: химия и экология. 2016. № 8. С. 11–25.

Марчук Н. Ю., Ежов В. Н. Влияние антропогенного загрязнения среды на содержание и состав эфирного масла Cupressus sempervires L. // Ученые записки Таврического национального университета им. В.И. Вернадского. Серия «Биология, химия». 2011. Т. 24, № 4. С. 151–155.

Опекунова М. Г., Крылова Ю. В., Курашов Е. А., Чихачева А. Ю. Изменение качества лекарственных растений Thymus marschallianus Willd. и Salvia stepposa Schost. под воздействием загрязнения тяжелыми металлами на Южном Урале // Бюллетень Брянского отделения Русского ботанического общества. 2013. № 2. С. 97–112.

Остроухов С. Б., Цыганкова В. А., Попова П. Ф. Биомаркеры (кадален и ретен) юрско–меловых отложений Северного Каспия и возможности их использования при палеогеографических реконструкциях // Осадочные бассейны, седиментационные и постседиментационные процессы вгеологической истории. Материалы VII Всероссийского литологического совещания(Новосибирск, 28–31 октября 2013 г.). Т. 2. Новосибирск, 2013. С. 356–359.

Павлова О. Н., Букин С. В. "Пришельцы" Байкала // Наука из первых рук. 2016. № 3 (69). С. 50–55.

Распопов И. М. Высшая водная растительность больших озер Северо–Запада СССР. Л.: Наука, 1985. 197 с.

Сотникова О. В., Степень Р. А. Эфирные масла сосны как индикатор загрязнения среды // Химия растительного сырья. 2001. №3. С.79–84.

Степень Р. А. Есякова О. А. Влияние антропогенного загрязнения среды на содержание и состав эфирного масла хвои ели // Хвойные бореальной зоны. 2007. Т. 24, № 1. С. 122–127.

Тихонова И. В., Анискина А. А., Мухортова Л. В., Лоскутов С. Р. Индивидуальная изменчивость cостава летучих выделений хвои сосны обыкновенной в популяциях Хакасии и Тувы // Сибирский экологический журнал. 2012. Т. 19, № 3. С. 397–405.

Ткачев А. В. Исследование летучих веществ растений. Новосибирск: Издательско–полиграфическое предприятие «Офсет», 2008. 969 с.

Aasim M., Khawar K. M., Ahmed S. I., Karataş M. Multiple Uses of Some Important Aquatic and Semiaquatic Medicinal Plants // Plant and Human Health. 2019. Vol. 2. P. 541–577.

Abbasi A.M., Shah M.H., Khan M. Phytochemical Contents of Wild Edible Vegetables // Wild edible vegetables of Lesser Himalayas: Ethnobotanical and nutraceutical aspects. 2015. Vol. 1. P.237–284. DOI 10.1007/978-3-319-09543-1_7

Arimura G., Matsui K., Takabayashi J. Chemical and Molecular Ecology of Herbivore–Induced Plant Volatiles: Proximate Factors and Their Ultimate Functions // Plant Cell Physiol. 2009. Vol. 50, № 5. P. 911–923. DOI: 10.1093/pcp/pcp030

Baharum S. N., Azizan K. A. Metabolomics in Systems Biology // Omics Applications for Systems Biology / Eds. W. M. Aizat et al. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol.1102. Springer Nature Switzerland AG, 2018. P. 51–68.

Chattha F. A., Munawar M. A., Nagra S. A., Ashraf M., Khan M. A., Kosur S. Synthesis of 3-Aryl-1H-Indazoles and Their Effects on Plant Growth // Journal of Plant Growth Regulation. 2013. Vol. 32. P. 291–297. DOI: 10.1007/s00344-012-9297-1

Christapher P., Parasuraman S., Christina J. A., Vikneswaran M., Asmawi M. Z. Review on Polygonum minus. Huds, a commonly used food additive in Southeast Asia // Pharmacognosy Research. 2015. Vol. 7(1). P. 1–6. DOI:10.4103/0974-8490.147125

Czekanowski J. Coefficient of racial likeness and durchschnittliche Differenz // Anthropol. Anz. 1922. Vol. 9. P. 227–249.

Duke J. A. Duke's Handbook of Medicinal Plants of Latin America. CRC Press, Taylor & Francis Group, Boca Raton, 2009. 832 p. DOI: 10.1201/9781420043174

Fall R., Karl T., Hansel A., Jordan A., Lindinger W. Volatile organic compounds emitted after leaf wounding: On-line analysis by proton-transfer-reaction mass spectrometry // Journal of Geophysical Research. 1999. Vol. 104, is. D13. P. 15963–15974. DOI: 10.1029/1999JD900144

Fink P. Ecological functions of volatile organic compounds in aquatic systems // Marine and freshwater behaviour and physiology. 2007. Vol. 40, № 3. P. 155–168. DOI: 10.1080/10236240701602218

Han P., Huang Y., Xie Y., Yang W., Xiang W., Hylands P. J., Legido‑Quigley C. Metabolomics reveals immunomodulation as a possible mechanism for the antibiotic effect of Persicaria capitata (Buch.–Ham. ex D. Don) H.Gross // Metabolomics. 2018. Vol. 14, № 91. P.1–9. DOI: 10.1007/s11306-018-1388-y

Hao D.C., Gu X.-J., Xiao P.G. Phytochemical and biological research of Polygoneae medicinal resources // Medicinal Plants. Chemistry, Biology and Omics. 2015. P. 465–529. DOI: 10.1016/B978-0-08-100085-4.00012-8

Hegazy A. K., Amer W. M., Khedr A. A. Allelopathic effect of Nymphaea lotus L. on growth and yield of cultivated rice around Lake Manzala (Nile Delta) // Hydrobiologia. 2001. Vol. 464. P. 133–142. DOI: 10.1023/A:1013943318230

Hinds H. R., Freeman C. C. Persicaria (L.) Mill. // Flora of North America North of Mexico: Magnoliophyta: Caryophyllidae (part 2), Vol. 5 (Flora of North America Editorial Committee, ed.). Oxford University Press, New York & Oxford, 2005. P. 574–594.

Hu H., Hong Y. Algal–bloom control by allelopathy of aquatic macrophytes—A review // Front. Environ. Sci. Engin. China. 2008. Vol. 2, № 4. P. 421–438. DOI: 10.1007/s11783-008-0070-4

Hu Z., Shen Y., Luo Y., Shen F., Gao H., Gao R. Aldehyde Volatiles Emitted in Succession from Mechanically Damaged Leaves of Poplar Cuttings // Journal of Plant Biology. 2008. Vol. 51, № 4. P. 269–275.

Jaccard P. Distribution de la flore alpine dans le Bassin des Dranses et dans quelques regions voisines // Bull. Soc. Vaudoise sci. Natur. 1901. Vol.37. Bd. 140. P. 241–272.

Jüttner F., Messina P., Patalano C., Zupo V. Odour compounds of the diatom Cocconeis scutellum: effects on benthic herbivores living on Posidonia oceanica // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2010. Vol. 400. P. 63–73. DOI: 10.3354/meps08381

Persicaria // Plants of the world online [Электронный ресурс]. URL: http://www.plantsoftheworldonline.org/taxon/urn:lsid:ipni.org:names:60433517-2 (дата обращения: 03.11.2019).

Prota N., Mumm R., Bouwmeester H.J., Jongsma M. A. Comparison of the chemical composition of three species of smartweed (genus Persicaria) with a focus on drimane sesquiterpenoids // Phytochemistry. 2014. Vol.108. P. 129-136. DOI: 10.1016/j.phytochem.2014.10.001

Rahnamaie-Tajadod R., Goh H.-H., Noor N.M. Methyl jasmonate-induced compositional changes of volatile organic compounds in Polygonum minus leaves // Journal of Plant Physiology. 2019. Vol. 240, 152994. DOI: 10.1016/j.jplph.2019.152994

Secondary Metabolites in Soil Ecology / Ed. P. Karlovsky, Soil Biology. Vol. 14. Springer–Verlag Berlin Heidelberg, 2008. 293 p.

Kurashov E. A., Krylova J. V., Mitrukova G. G., Chernova A. M. Low–molecular–weight metabolites of aquatic macrophytes growing on the territory of Russia and their role in hydroecosystems // Contemporary Problems of Ecology. 2014. Vol. 7, № 4. P. 433–448. DOI: 10.1134/S1995425514040064

Kurashov E. A., Mitrukova G. G., Krylova Yu. V. Interannual Variability of Low–Molecular Metabolite Composition in Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae) from a Floodplain Lake with a Changeable Trophic Status // Contemporary Problems of Ecology. 2018. Vol. 11, № 2. P. 179–194. DOI: 10.1134/S1995425518020063

Kurashov E.A., Fedorova E.V., Krylova J.V., Mitrukova G.G. Assessment of the Potential Biological Activity of Low Molecular Weight Metabolites of Freshwater Macrophytes with QSAR // Scientifica. 2016. Vol. 2016. Article ID 1205680. 9 pp. DOI: 10.1155/2016/1205680

Morisita M. Measuring of interspecific association and similarity between communities // Memoires of the Faculty of Science, Kyushu University, Series E (Biology). 1959. № 3. P. 65–80.

Nakai S., Yamada S., Hosomi M. Anti–cyanobacterial fatty acids released from Myriophyllum spicatum // Hydrobiologia. 2005. Vol. 543. P. 71–78. DOI: 10.1007/s10750-004-6822-7

Soni B., Ranawat M. S., Sharma R., Bhandari A., Sharma S. Synthesis and evaluation of some new benzothiazole derivatives as potential antimicrobial agents // Eur. J. Med. Chem., 2010. Vol. 45, № 7. P. 2938–2942. DOI: 10.1016/j.ejmech.2010.03.019

Sorensen T. A. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content, and its application to analyses of the vegetation on Danish com–mons // Kongelige Danske Videnskabernes Selskabs Biologiske Skrifter. 1948. Vol. 5. P. 1–34.

Sun X., Jin H., Zhang L., Hu W., Li Y., Xu N. Screening and isolation of the algicidal compounds from marine green alga Ulva intestinalis // Chin. J. Ocean. Limnol. 2016. Vol. 34. Р. 781–788. DOI: 10.1007/s00343–016–4383–z

Swapna M. M., Prakashkumar R, Anoop K. P., Manju C. N., Rajith N. P. A review on the medicinal and edible aspects of aquatic and wetland plants of India // J. Med. Plants Res. 2011. Vol.5, № 33. P.7163–7176.

Volodin V., Chadin I., Whiting P., Dinan L. Screening plants of European North-East Russia for ecdysteroids // Biochemical Systematics and Ecology. 2002. Vol. 30. P. 525–578.

Walsh K., Jones G. J., Dunstan R. H. Effect of high irradiance and iron on volatile odour compounds in the cyanobacterium Microcystis aeruginosa // Phytochemistry. 1998. Vol.49, №5. P. 1227–1239. DOI: 10.1016/s0031-9422(97)00943-6

Watson S. B., Caldwell G., Pohnert G. Fatty Acids and Oxylipins as Semiochemicals // Lipids in Aquatic Ecosystems. Springer. 2009. P. 65–91.

Wenchuan Q., Dickman M., Sumin W., Ruijin W., Pingzhong Z., Jianfa C. Evidence for an aquatic plant origin of ketones found in Taihu Lake sediments // Hydrobiologia. 1999. Vol.397. P. 149–154. DOI: 10.1023/A:1003624625076.

Zheng, L., Lu, Y., Cao, X., Huang, Y., Liu, Y., Tang, L., Wang, Y.–L. Evaluation of the impact of Polygonum capitatum, a traditional Chinese herbal medicine, on rat hepatic cytochrome P450 enzymes by using a cocktail of probe drugs // Journal of Ethnopharmacology. 2014. Vol.158. P. 276–282. DOI:10.1016/j.jep.2014.10.031

Zhou J., Xie G., Yan X. Encyclopedia of Traditional Chinese Medicines. Molecular Structures, Pharmacological Activities, Natural Sources and Applications. Vol. 6: Indexes. Springer, 2011. 730 p. DOI: 10.1007/978–3–642–16744–7.

Zuo S., Zhou S., Ye L., Ding Y., Jiang X. Antialgal effects of five individual allelochemicals and their mixtures in low level pollution conditions // Environ. Sci. Pollut. Res. 2016. Vol. 23. Р. 15703–15711. DOI: 10.1007/s11356–016–6770–6

References

Bushnev D. A., Valyaeva O. V., Kotik I. S., Burdel'naya N. S., Burtsev I. N. Sostav biomarkerov bitumoidov iz uglei i vmeshchayushchikh otlozhenii severo-vostoka Pechorskogo ugol'nogo basseina [Composition of biomarkers of bitumen from coal and host deposits of the north-east of the Pechora coal basin]. Vestnik Inst. geol. Komi nauch. tsentra Ural'skogo otd. RAN [Bull. Inst. Geol., Komi Sci. Center, Ural Br. RAS]. 2016. No. 6(258). P. 3–10.

GOST 24027.2–80. Syr'e lekarstvennoe rastitel'noe. Metody opredeleniya vlazhnosti, soderzhaniya zoly, ekstraktivnykh i dubil'nykh veshchestv, efirnogo masla [GOST 24027.2–80. Herbal raw materials. Methods for determining humidity, ash content, extractive and tannins, essential oils].

Gorets zemnovodnyi [Water smartweed]. Entsiklopediya lekarstvennykh rastenii [Encyclopedia of Medicinal Plants]. URL: http://medgrasses.ru/gorez_zemnovodny.html (accessed: 04.09.2019).

Gurevich F. A. Rol' fitontsidov vo vnutrennikh vodoemakh [The role of phytoncides in inland waters]. Vodnye resursy [Water Resources]. 1978. No. 2. P. 133–142.

Kashina L. I., Tupitsyna N. N. Sem. Polygonaceae – grechishnye [Polygonaceae - Buckwheat]. Flora Sibiri [Siberian Flora]. Novosibirsk, 1992. Vol. 5. P. 106–108.

Krylova J. V., Kurashov E. A., Mitrukova G. G. Komponentnyi sostav letuchikh nizkomolekulyarnykh organicheskikh soedinenii Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae), proizrastayushchego v razlichnykh klimaticheskikh usloviyakh [Component composition of the low molecular weight volatile organic compounds of Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae) growing in different climatic conditions]. Voda: khimiya i ekol. [Water: Chemistry and Ecol.]. 2016. No. 8. P. 11–25.

Marchuk N. Yu., Ezhov V. N. Vliyanie antropogennogo zagryazneniya sredy na soderzhanie i sostav efirnogo masla Cupressus sempervires L. [Influence of anthropogenic pollution of the environment on the content and composition of essential oil of Cupressus sempervires L.]. Uchenye zapiski Tavricheskogo nats. univ. im. V. I. Vernadskogo. Ser. Biol., khimiya [Proceed. V.I. Vernadsky Taurida National Univ. Ser. Biol. Chem.]. 2011. Vol. 24, no. 4. P. 151–155.

Opekunova M. G., Krylova Yu. V., Kurashov E. A., Chikhacheva A. Yu. Izmenenie kachestva lekarstvennykh rastenii Thymus marschallianus Willd. i Salvia stepposa Schost. pod vozdeistviem zagryazneniya tyazhelymi metallami na Yuzhnom Urale [Change in the quality of medicinal plants Thymus marschallianus Willd. and Salvia stepposa Schost. under the influence of heavy metal pollution in the South Urals]. Byull. Bryanskogo otd. Russ. botanich. obshchestva [Bull. Bryansk Br. Russian Botanical Society]. 2013. No. 2. P. 97–112.

Ostroukhov S. B., Tsygankova V. A., Popova P. F. Biomarkery (kadalen i reten) yursko-melovykh otlozhenii Severnogo Kaspiya i vozmozhnosti ikh ispol'zovaniya pri paleogeograficheskikh rekonstruktsiyakh [Biomarkers (cadalene and retene) of Jurassic-Cretaceous deposits of the Northern Caspian and the possibilities of their use in paleogeographic reconstructions]. Osadochnye basseiny, sedimentatsionnye i postsedimentatsionnye protsessy v geol. istorii: Mat. VII Vseros. litolog. soveshch. (Novosibirsk, 28–31 okt. 2013 g.) [Sedimentary basins, sedimentation and post-sedimentation processes in geol. history. Proceed. VII All-Russ. lithol. meeting (Novosibirsk, Oct. 28–31, 2013)ъ. Novosibirsk, 2013. Vol. 2. P. 356–359.

Pavlova O. N., Bukin S. V. «Prishel'tsy» Baikala ["Aliens" of Lake Baikal]. Nauka iz pervykh ruk [First-hand Sci.]. 2016. No. 3(69). P. 50–55.

Raspopov I. M. Vysshaya vodnaya rastitel'nost' bol'shikh ozer Severo-Zapada SSSR [Higher aquatic vegetation of large lakes of the North-West of the USSR]. Leningrad: Nauka, 1985. 197 p.

Sotnikova O. V., Stepen' R. A. Efirnye masla sosny kak indikator zagryazneniya sredy [Essential oils of pine as an indicator of environmental pollution]. Khimiya rastitel'nogo syr'ya [Chemistry of Plant Raw Materials]. 2001. No. 3. P. 79–84.

Stepen' R. A. Esyakova O. A. Vliyanie antropogennogo zagryazneniya sredy na soderzhanie i sostav efirnogo masla khvoi eli [Influence of anthropogenic pollution on the content and composition of pine needles essential oil]. Khvoinye boreal'noi zony [Coniferous of the Boreal Zone]. 2007. Vol. 24, no. 1. P. 122–127.

Tikhonova I. V., Aniskina A. A., Mukhortova L. V., Loskutov S. R. Individual variability in the composition of volatile secretions of scots pine needles in populations of Khakassia and Tuva. Contemp. Probl. Ecol. 2012. Vol. 5, no. 3. P. 292–299. doi: 10.1134/S1995425512030171

Tkachev A. V. Issledovanie letuchikh veshchestv rastenii [Study of volatile substances of plants]. Novosibirsk: Offset, 2008. 969 p.

Aasim M., Khawar K. M., Ahmed S. I., Karataş M. Multiple uses of some important aquatic and semiaquatic medicinal plants. Plant and Human Health. 2019. Vol. 2. P. 541–577.

Abbasi A. M., Shah M. H., Khan M. Phytochemical contents of wild edible vegetables. Wild edible vegetables of Lesser Himalayas: Ethnobotanical and nutraceutical aspects. 2015. Vol. 1. P. 237–284. doi: 10.1007/978-3-319-09543-1_7

Arimura G., Matsui K., Takabayashi J. Chemical and molecular ecology of herbivore-induced plant volatiles: Proximate factors and their ultimate functions. Plant Cell Physiol. 2009. Vol. 50, no. 5. P. 911–923. doi: 10.1093/pcp/pcp030

Baharum S. N., Azizan K. A. Metabolomics in systems biology. Omics applications for systems biology. Eds. W. M. Aizat et al. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 1102. Springer Nature Switzerland AG, 2018. P. 51–68.

Chattha F. A., Munawar M. A., Nagra S. A., Ashraf M., Khan M. A., Kosur S. Synthesis of 3-Aryl-1H-Indazoles and their effects on plant growth. J. Plant Growth Regulation. 2013. Vol. 32. P. 291–297. doi: 10.1007/s00344-012-9297-1

Christapher P., Parasuraman S., Christina J. A., Vikneswaran M., Asmawi M. Z. Review on Polygonum minus. Huds, a commonly used food additive in Southeast Asia. Pharmacognosy Research. 2015. Vol. 7(1). P. 1–6. doi: 10.4103/0974-8490.147125

Czekanowski J. Coefficient of racial likeness and durchschnittliche Differenz. Anthropol. Anz. 1922. Vol. 9. P. 227–249.

Duke J. A. Duke's handbook of medicinal plants of Latin America. Boca Raton: CRC Press, Taylor & Francis Group, 2009. 832 p. doi: 10.1201/9781420043174

Fall R., Karl T., Hansel A., Jordan A., Lindinger W. Volatile organic compounds emitted after leaf wounding: On-line analysis by proton-transfer-reaction mass spectrometry. J. Geophys. Res. 1999. Vol. 104. P. 15963–15974. doi: 10.1029/1999JD900144

Fink P. Ecological functions of volatile organic compounds in aquatic systems. Mar. Freshwat. Behave. Physiol. 2007. Vol. 40, no. 3. P. 155–168. doi: 10.1080/10236240701602218

Han P., Huang Y., Xie Y., Yang W., Xiang W., Hylands P. J., Legid-Quigley C. Metabolomics reveals immunomodulation as a possible mechanism for the antibiotic effect of Persicaria capitata (Buch.-Ham. ex D. Don) H. Gross. Metabolomics. 2018. Vol. 14(91). P. 1–9. doi: 10.1007/s11306–018–1388–y

Hao D. C., Gu X.-J., Xiao P. G. Phytochemical and biological research of Polygoneae medicinal resources. Medicinal Plants. Chemistry, Biology and Omics. 2015. P. 465–529. doi: 10.1016/B978-0-08-100085-4.00012-8

Hegazy A. K., Amer W. M., Khedr A. A. Allelopathic effect of Nymphaea lotus L. on growth and yield of cultivated rice around Lake Manzala (Nile Delta). Hydrobiologia. 2001. Vol. 464. P. 133–142. doi: 10.1023/A:1013943318230

Hinds H. R., Freeman C. C. Persicaria (L.) Mill. Flora of North America North of Mexico: Magnoliophyta: Caryophyllidae (part 2). Vol. 5 (Flora of North America Editorial Committee, ed.). New York & Oxford: Oxford University Press, 2005. P. 574–594.

Hu H., Hong Y. Algal-bloom control by allelopathy of aquatic macrophytes—A review. Front. Environ. Sci. Engin. China. 2008. Vol. 2, no. 4. P. 421–438. doi: 10.1007/s11783-008-0070-4

Hu Z., Shen Y., Luo Y., Shen F., Gao H., Gao R. Aldehyde volatiles emitted in succession from mechanically damaged leaves of poplar cuttings. J. Plant Biol. 2008. Vol. 51, no. 4. P. 269–275.

Jaccard P. Distribution de la flore alpine dans le Bassin des Dranses et dans quelques regions voisines. Bull. Soc. Vaudoise Sci. Natur. 1901. Vol. 37. Bd. 140. P. 241–272.

Jüttner F., Messina P., Patalano C., Zupo V. Odour compounds of the diatom Cocconeis scutellum: effects on benthic herbivores living on Posidonia oceanic. Mar. Ecol. Prog. Ser. 2010. Vol. 400. P. 63–73. doi: 10.3354/meps08381

Kurashov E. A., Krylova J. V., Mitrukova G. G., Chernova A. M. Low-molecular-weight metabolites of aquatic macrophytes growing on the territory of Russia and their role in hydroecosystems. Contemp. Probl. Ecol. 2014. Vol. 7, no. 4. P. 433–448. doi: 10.1134/S1995425514040064

Kurashov E. A., Mitrukova G. G., Krylova Yu. V. Interannual variability of low-molecular metabolite composition in Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae) from a floodplain lake with a changeable trophic status. Contemp. Probl. Ecol. 2018. Vol. 11, no. 2. P. 179–194. doi: 10.1134/S1995425518020063

Kurashov E.A., Fedorova E.V., Krylova J.V., Mitrukova G.G. Assessment of the potential biological activity of low molecular weight metabolites of freshwater macrophytes with QSAR. Scientifica. 2016. Vol. 2016. Article ID 1205680. 9 p. doi: 10.1155/2016/1205680

Morisita M. Measuring of interspecific association and similarity between communities. Memoires of the Faculty of Science, Kyushu University, Series E (Biology). 1959. No. 3. P. 65–80.

Nakai S., Yamada S., Hosomi M. Anti-cyanobacterial fatty acids released from Myriophyllum spicatum. Hydrobiologia. 2005. Vol. 543. P. 71–78. doi: 10.1007/s10750-004-6822-7

Persicaria. Plants of the world online. URL: http://www.plantsoftheworldonline.org/taxon/urn:lsid:ipni.org:names:60433517-2 (accessed: 03.11.2019).

Prota N., Mumm R., Bouwmeester H. J., Jongsma M. A. Comparison of the chemical composition of three species of smartweed (genus Persicaria) with a focus on drimane sesquiterpenoids. Phytochemistry. 2014. Vol. 108. P. 129–136. doi: 10.1016/j.phytochem.2014.10.001

Rahnamaie-Tajadod R., Goh H.-H., Noor N. M. Methyl jasmonate-induced compositional changes of volatile organic compounds in Polygonum minus leaves. J. Plant Physiol. 2019. Vol. 240. Art. 152994. doi: 10.1016/j.jplph.2019.152994

Secondary Metabolites in Soil Ecology. Ed. P. Karlovsky. Soil Biology. Vol. 14. Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag, 2008. 293 p.

Soni B., Ranawat M. S., Sharma R., Bhandari A., Sharma S. Synthesis and evaluation of some new benzothiazole derivatives as potential antimicrobial agents. Eur. J. Med. Chem. 2010. Vol. 45(7). P. 2938–2942. doi: 10.1016/j.ejmech.2010.03.019

Sorensen T. A. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content, and its application to analyses of the vegetation on Danish commons. Kongelige Danske Videnskabernes Selskabs Biologiske Skrifter. 1948. Vol. 5. P. 1–34.

Sun X., Jin H., Zhang L., Hu W., Li Y., Xu N. Screening and isolation of the algicidal compounds from marine green alga Ulva intestinalis. Chin. J. Ocean. Limnol. 2016. Vol. 34. Р. 781–788. doi: 10.1007/s00343–016–4383–z

Swapna M. M., Prakashkumar R., Anoop K. P., Manju C. N., Rajith N. P. A review on the medicinal and edible aspects of aquatic and wetland plants of India. J. Med. Plants Res. 2011. Vol. 5, no. 33. P. 7163–7176.

Volodin V., Chadin I., Whiting P., Dinan L. Screening plants of European North-East Russia for ecdysteroids. Biochem. Syst. Ecol. 2002. Vol. 30. P. 525–578.

Walsh K., Jones G. J., Dunstan R. H. Effect of high irradiance and iron on volatile odour compounds in the cyanobacterium Microcystis aeruginosa. Phytochemistry. 1998. Vol. 49. no. 5. P. 1227–1239. doi: 10.1016/s0031-9422(97)00943-6

Watson S. B., Caldwell G., Pohnert G. Fatty acids and oxylipins as semiochemicals. Lipids in Aquatic Ecosystems. Springer, 2009. P. 65–91.

Wenchuan Q., Dickman M., Sumin W., Ruijin W., Pingzhong Z., Jianfa C. Evidence for an aquatic plant origin of ketones found in Taihu Lake sediments. Hydrobiologia. 1999. Vol. 397. P. 149–154. doi: 10.1023/A:1003624625076

Zheng L., Lu Y., Cao X., Huang Y., Liu Y., Tang L., Wang Y.-L. Evaluation of the impact of Polygonum capitatum, a traditional Chinese herbal medicine, on rat hepatic cytochrome P450 enzymes by using a cocktail of probe drugs. J. Ethnopharmacol. 2014. Vol. 158. P. 276–282. doi: 10.1016/j.jep.2014.10.031

Zhou J., Xie G., Yan X. Encyclopedia of traditional Chinese medicines. Molecular structures, pharmacological activities, natural sources and applications. Vol. 6: Indexes. Springer, 2011. 730 p. doi: 10.1007/978–3–642–16744–7.

Zuo S., Zhou S., Ye L., Ding Y., Jiang X. Antialgal effects of five individual allelochemicals and their mixtures in low level pollution conditions. Environ. Sci. Pollut. Res. 2016. Vol. 23. Р. 15703–15711. doi: 10.1007/s11356-016-6770-6




DOI: http://dx.doi.org/10.17076/lim1141

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.


© Труды КарНЦ РАН, 2014-2019