Кровь рыб – высокоинформативная среда для оценки состояния гомеостаза, что делает гематологические показатели (гематокрит, концентрацию гемоглобина, состав форменных элементов и наличие морфологических аномалий) перспективными биомаркерами для оценки здоровья рыб, диагностики заболеваний различной этиологии и биомониторинга водных экосистем. Однако их практическое использование ограничено недостатком референсных данных для многих видов, обитающих в природных условиях. Целью настоящего исследования было проведение цитоморфологического анализа периферической крови леща (Abramis brama (L., 1758)) из оз. Сямозеро (Республика Карелия) и установление характерных особенностей эритрограммы и лейкограммы. Объектом исследования служили поло- возрелые особи обоих полов в возрасте от 3+ до 9+, выловленные в июне 2024 г. Гидрохимический анализ воды подтвердил отсутствие превышения предельно допустимых концентраций загрязняющих веществ, что позволяет рассматривать данный водоем как модельный для установления референсных показателей. Методом световой микроскопии окрашенных мазков проведен дифференциальный подсчет лейкоцитов и оценка морфологических аномалий эритроцитов. Установлено, что основную массу клеток крови составляют зрелые эритроциты, доля юных форм не превышает 2,4 %. Среди аномалий эритроцитов наиболее распространен пойкилоцитоз (в среднем 10 % эритроидных клеток), также встречались эритроциты с эксцентрически или периферически расположенным ядром (у 5,0 % рыб), агглютинированные (у 25,0 % особей) с образованием цепочек от 3 до 27 клеток, с фестончатым краем (не более 1,0 % всех эритроцитов, у 75,0 % рыб), с признаками амитотического деления (единичные находки). Лейкограмма леща имеет типичный лимфоидный характер (лимфоциты до 89 %), среди гранулоцитов доминируют псевдоэозинофилы. Статистически значимых различий по содержанию форменных элементов крови в зависимости от пола не выявлено. Полученные данные восполняют пробелы в области гематологии карповых рыб, представляют количественные критерии для оценки физиологического состояния особей и популяций и могут служить основой для сравнительного анализа в токсикологических, экологических и рыбоводных исследованиях. Пополнение базы изображений гемоцитов леща также необходимо для автоматизации дифференциального подсчета гемоцитов с использованием методов нейросетевого моделирования.

Анисимова И. М., Лавровский В. В. Ихтиология: Учеб. пособие для высш. с.-х. учеб. заведений по спец. «Зоотехния». М.: Высш. шк., 1983. 255 с.

Валова В. Н. Физиологический статус сеголеток калуги и реципрокного гибрида стерлядь × калуга в период зимовки // Известия ТИНРО. 2015. Т. 182. С. 226–241.

Головина Н. А., Тромбицкий И. Д. Гематология прудовых рыб. Кишинев: Штиинца, 1989. 156 с.

Дгебуадзе Ю. Ю., Чернова О. Ф. Чешуя костистых рыб как диагностическая и регистрирующая структура. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2009. 315 с.

Иванов А. А. Физиология рыб. М.: Мир, 2003. 284 с.

Иванова Н. Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Легкая и пищевая пром-сть, 1983. 184 с.

Иванова Н. Т. Материалы к морфологии крови рыб. Ростов-на-Дону, 1970. 136 с.

Камышников В. С. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям в лабораторной диагностике. М.: МЕДПресс-информ, 2004. С. 56–60.

Конькова А. В., Файзулина Д. Р., Ширина Ю. М., Богатов И. А. Генотоксические эффекты в клетках крови осетровых рыб (Acipenseridae) в условиях садкового хозяйства дельты Волги // Юг России: экология, развитие. 2024. Т. 19, № 2. C. 69–81. doi: 10.18470/1992-1098-2024-2-7

Конькова А. В., Федорова Н. Н. Патоморфологические изменения эритроцитов молоди леща Abramis brama Волжско-Каспийского бассейна // Труды ВНИРО. 2016. Т. 162. С. 12–19.

Микряков В. Р., Микряков Д. В. Лейкограмма крови карпа Сyprinus carpio L. при язвенной болезни кожи // Ветеринарная патология. 2007. № 3. С. 107–110.

Солдатов А. А. Моноцикличность в функционировании эритроидного ростка гемопоэза у костистых рыб, на примере Platichthys flesus (Linnaeus, 1758) // Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2023. T. 512, № 1. С. 495–499. doi: 10.31857/ S2686738923600395

Стерлигова О. П., Ильмаст Н. В. Состояние популяций корюшки Оsmerus perlanus Выгозера и Сямозера, сформировавшихся в результате саморасселения // Вопросы ихтиологии. 2012. Т. 52, № 3. С. 358–364.

Стерлигова О. П., Ильмаст Н. В., Аникиева Л. В. Сравнительный анализ популяционных показателей ряпушки Coregonus albula (Salmonidae: Coregoninae) Сямозера в разных условиях обитания // Вопросы ихтиологии. 2024. Т. 64, № 4. С. 391–400. doi: 10.31857/S0042875224040023

Суворова Т. А., Герман А. В. Лейкоцитарный состав периферической крови и иммунокомпетентных органов леща Аbramis brama (Сyprinidae) водохранилищ верхней Волги // Вопросы ихтиологии. 2024. Т. 64, № 2. С. 248–252. doi: 10.31857/S0042875224020101

Шеина Т. А., Михеев П. Б., Мухина М. В., Костицына Н. В., Бакланов М. А. Влияние засоления и повышенной температуры воды на характеристики крови рыб в условиях бореальных водоемов: результаты эксперимента с использованием молоди речного окуня Perca fluviatilis бассейна р. Камы (Пермский край, Россия) // Вестник Астраханского гос. техн. ун-та. Сер. Рыбное хозяйство. 2022. № 4. С. 123–134. doi: 10.24143/2073-5529-2022-4-123-134

Ahmed I., Reshi Q. M., Fazio F. The influence of the endogenous and exogenous factors on hematological parameters in different fish species: A review // Aquacult. Int. 2020. Vol. 28. P. 869–899. doi: 10.1007/ s10499-019-00501-3

Casanovas P., Walker S. P., Johnston H., Johnston C., Symonds J. E. Comparative assessment of blood biochemistry and haematology normal ranges between Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) from seawater and freshwater farms // Aquaculture. 2021. Vol. 537. Art. 736464. doi: 10.1016/j.aquaculture.2021.736464

Chen H., Yuan G., Su J., Liu X. Hematological analysis of Ctenopharyngodon idella, Megalobrama amblycephala and Pelteobagrus fulvidraco: Morphology, ultrastructure, cytochemistry and quantification of peripheral blood cells // Fish & Shellfish Immunology. 2019. Vol. 90. P. 376–384. doi: 10.1016/j.fsi.2019.04.044

de Oliveira J. S. P., Vieira L. G., Carvalho W. F., de Souza M. B., de Lima Rodrigues A. S., Simões K., de Melo De Silva D., Dos Santos Mendonça J., Hirano L. Q. L., Santos A. L. Q., Malafaia G. Mutagenic, genotoxic and morphotoxic potential of different pesticides in the erythrocytes of Podocnemis expansa neonates // Sci. Total. Environ. 2020. Vol. 737. Art. 140304. doi: 10.1016/j.scitotenv.2020.140304

Fazio F. Fish hematology analysis as an important tool of aquaculture: A review // Aquaculture. 2019. Vol. 500. P. 237–242. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.10.030

Havixbeck J. J., Rieger A. M., Wong M. E., Hodgkinson J. W., Barreda D. R. Neutrophil contributions to the induction and regulation of the acute inflammatory response in teleost fish // Journal of Leukocyte Biology. 2016. Vol. 99. Р. 1–12. doi: 10.1189/ jlb.3HI0215-064R

Kanu K. C., Okoboshi A. C., Otitoloju A. A. Haematological and biochemical toxicity in freshwater fish Clarias gariepinus and Oreochromis niloticus following pulse exposure to atrazine, mancozeb, chlorpyrifos, lambdacyhalothrin, and their combination // Comp. Biochem. Physiol. C. 2023. Vol. 270. Art. 109643. doi: 10.1016/j.cbpc.2023.109643

Kaur K., Kaur A. Fish erythrocytes as biomarkers for the toxicity of sublethal doses of an azo dye, Basic violet-1 (CI: 42535) // Microsc. Microanal. 2015. Vol. 21. P. 264–273. doi: 10.1017/S143192761401360

Kubra A. K. Anesthetic efficacy of clove oil and 2-phenoxyethanol as hematological, histopathological and echocardiographic on broodstock Danube sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) // J. Appl. Ichthyol. 2022. Vol. 38. P. 586–595. doi: 10.1111/jai.14361

Michail G., Berillis P., Nakas C., Henry M., Mente E. Haematology reference values for Dicentrarchus labrax and Sparus aurata: A systematic review and metaanalysis // J. Fish Dis. 2022. Vol. 45. P. 1549–1570. doi: 10.1111/jfd.13680

Rohani M. F. Pesticides toxicity in fish: Histopathological and hemato biochemical aspects: A review // Emerg. Contam. 2023. Vol. 9. Art. 100234. doi: 10.1016/j.emcon.2023.100234

Sheikh Z. A., Ahmed I., Jan K., Nabi N., Fazio F. Haematological profile, blood cell characteristic and serum biochemical composition of cultured brown trout, Salmo trutta fario with respect to sex // Heliyon. 2022. Vol. 8. e10247. doi: 10.1016/j.heliyon.2022.e10247

Soldatov A. A. Peculiarities of organization and functioning of the fish red blood system // J. Evol. Biochem. Physiol. 2005. Vol. 41. P. 272–281. doi: 10.1007/s10893-005-0060-0

Stankevičiūtė M., Bučaitė A., Pažusienė J., Jurgelėnė Ž., Dainys J. Impact of fin erosion on biomarker responses in Salmo trutta: implications for the reliability of biological effects monitoring in aquatic environments // Fishes. 2026. Vol. 11, no. 3. P. 181. doi: 10.3390/fishes11030181

Witeska M., Kondera E., Bojarski B. Hematological and hematopoietic analysis in fish toxicology: A review // Animals (Basel). 2023. Vol. 13, no. 16. Art. 2625. doi:10.3390/ani13162625

Witeska M., Kondera E., Ługowska K. The effects of ichthyophthiriasis on some haematological parameters in common carp // Turk. J. Vet. Anim. Sci. 2010. Vol. 34. P. 267–271. doi: 10.3906/vet-0903-26

Witeska M., Kondera E., Ługowska K., Bojarski B. Hematological methods in fish – Not only for beginners // Aquaculture. 2022. Vol. 547. Art. 737498. doi:10.1016/j.aquaculture.2021.737498

Wu L., Qin Z., Liu H., Lin L., Ye J., Li J. Recent Advances on Phagocytic B Cells in Teleost Fish // Front Immunol. 2020. Vol. 11. Art. 824. doi: 10.3389/fimmu.2020.00824

Zheng Z. X., Tang Y., Fang J., Peng X., Fan J. D., Cui H. M., Yang L. Z. Ultrastructural and cytochemical properties of peripheral blood cells of piebald naked carp (Gymnocypris eckloni) // Anatomia, histologia, embryologia. 2017. Vol. 46, no. 1. Р. 17–24. doi: 10.1111/ahe.12225