Активность лизосомальных ферментов в органах беломорских мидий Mytilus edulis L. под воздействием сырой нефти в условиях различной солености
Аннотация
В аквариальных экспериментах, имитирующих разлив сырой нефти в приливно-отливной зоне, изучено влияние этого токсиканта на активность лизосомальных гидролаз в разных органах беломорских мидий Mytilus edulis Linnaeus 1758. Моллюсков выдерживали в течение 1, 5 и 10 суток в трёх концентрациях поллютанта (0,05; 0,25 и 2,50 мл/л). Воздействие нефтяного загрязнения изучали в сочетании с нормальной для поверхностных вод Белого моря (25 ‰) и пониженной (15 ‰) соленостью, что соответствует встречающимся в реальности экологическим ситуациям при разливах нефти на морском побережье и в эстуариях. В жабрах и гепатопанкреасе определяли активность шести лизосомальных ферментов (кислой фосфатазы, РНКазы, ДНКазы, β-глюкозидазы, β-галактозидазы, β-глюкуронидазы). Показано, что оба испытанных фактора (распреснение морской воды и воздействие нефти) оказывали существенное влияние на активность кислых гидролаз. Наиболее ярко лизосомальная реакция на нефть проявлялась в жабрах моллюсков в условиях нормальной солености при концентрации 0,25 мл/л и экспозиции 10 суток, о чем свидетельствует возрастание в несколько раз активности кислой фосфатазы, ДНКазы, β-галактозидазы и β-глюкуронидазы по сравнению с контролем. В гепатопанкреасе отмечена та же зависимость в изменении активности ферментов, но на меньшую величину. Влияние распреснения морской воды до 15 ‰ в контрольном варианте в жабрах вызывало небольшое повышение активности ДНКазы, β-галактозидазы и β-глюкуронидазы, в то же время в гепатопанкреасе влияние этого фактора достоверно не проявлялось. Совместное воздействие распреснения и нефтяного загрязнения несколько снижало защитные функции лизосомального аппарата в органах мидий, особенно это было заметно при высоких концентрациях нефти и длительной экспозиции моллюсков в условиях эксперимента. Таким образом, результаты проведенного исследования продемонстрировали активное участие лизосомального аппарата жабр и гепатопанкреаса моллюсков в адаптивных реакциях к комбинированному воздействию нефтяного загрязнения и пониженной солености воды. Компенсаторные изменения в активности ферментного комплекса лизосом направлены на утилизацию, трансформацию и выведение из организма нефтяных компонентов, ликвидацию поврежденных воздействием токсиканта структур и макромолекул, а также обеспечение жизнедеятельности организма в сложившихся неблагоприятных условиях.
Ключевые слова
Полный текст:
PDFЛитература
Баррет А. Дж., Хит М. Ф. Лизосомальные ферменты // Лизосомы. Методы исследования. М.: Мир, 1980. С. 25−56.
Бахмет И. Н., Фокина Н. Н., Нефедова З. А., Руоколайнен Т. Р., Немова Н. Н. Мидия Mytilus edulis L. Белого моря как биоиндикатор при воздействии растворенных нефтепродуктов // Труды КарНЦ РАН. 2012. № 2. С. 38–46.
Бергер В. Я. Адаптации морских моллюсков к изменениям солености среды. Л.: Наука, 214 с.
Ващенко М. А. Загрязнение залива Петра Великого Японского моря и его биологические последствия // Биология моря. 2000. Т. 26. № 3. С. 149–159.
Воробьев Д. С. Влияние нефти и нефтепродуктов на макрозообентос // Известия Томского политехнического университета. 2006. Т. 309. № 3. С. 42–45.
Воробьев Д. С. Биологические основы очистки донных отложений водных объектов от нефти и нефтепродуктов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Томск, 2013. 46 с.
Высоцкая Р. У., Немова Н. Н. Лизосомы и лизосомальные ферменты рыб. М.: Наука, 2008. 284 с.
Гублер Е. В., Генкин А. А. Применение критериев непараметрической статистики для оценки различий двух групп наблюдений в медико-биологических исследованиях. М.: Медицина, 1969. 29 с.
Дивавин И. А., Копытов Ю. П., Белойваненко В. Н. Обменные процессы в тканях мидий в период адаптации к углеводородной интоксикации и изменениям условий среды обитания // Известия АН СССР. Серия биологическая. 1989. № 2. С. 204–214.
Клишин А. Ю., Каниева Н. А., Баджаева О. В., Фёдорова Н. А. Нарушения органов и тканей моллюсков рода Unio под воздействием нефти // Труды ВНИРО. 2016. Т. 162. С. 82–86.
Коршунова Т. Ю., Логинов О. Н. Нефтяное загрязнение водной среды: особенности, влияние на различные объекты гидросферы, основные методы очистки // Экобиотех. 2019. Т. 2. № 2. С. 157–174. doi: 10.31163/2618-964X-2019-2-2-157-174
Левицкий А. П., Барабаш Р. Д., Коновец В. М. Сезонные особенности активности рибонуклеазы и α-амилазы слюны и слюнных желез у крыс линии Вистар // Биохимическая эволюция. Л.: Наука, 1973. С. 192−195.
Немировская И. А. Нефть в океане (загрязнение и природные потоки). М.: Научный мир, 2013. 432 с.
Немова Н. Н., Высоцкая Р. У. Биохимическая индикация состояния рыб. М.: Наука, 2004. 216 с.
Патин С. А. Нефть и экология континентального шельфа. В 2-х томах. Т. 1. Морской нефтегазовый комплекс: состояние, перспективы, факторы воздействия. М.: Изд-во ВНИРО, 2017. 326 с.
Покровский А. А., Арчаков А. И. Методы разделения и ферментной идентификации субклеточных фракций // Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1968. С. 5−59.
Покровский А. А., Кравченко Л. В., Тутельян В. А. Исследование активности ферментов лизосом при действии афлатоксина и митомицина С // Биохимия. 1971. Т. 36. Вып. 4. С 690−696.
Сираева И. Н., Ляпина Н. К. Сернистые соединения нефтей различного типа // Башкирский химический журнал. 2011. Т. 18. № 1. С. 135−139.
Скидченко В. С., Высоцкая Р. У., Немова Н. Н. Спектр изоформ кислой дезоксирибонуклеазы в тканях мидий Mytilus edulis в условиях модельной интоксикации нефтепродуктами // Труды КарНЦ РАН. 2012. № 2. С. 131−138.
Фокина Н. Н., Бахмет И. Н., Немова Н. Н. Совместное влияние нефти и пониженной солености морской воды на липидный состав гепатопанкреаса беломорских мидий Mytilus edulis // Труды Зоологического института РАН. 2016. Т. 320. № 3. С. 357−366.
Фокина Н. Н., Нефёдова З. А., Немова Н. Н. Липидный состав мидий Mytilus edulis L. Белого моря. Влияние некоторых факторов среды обитания. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2010. 243 с.
Щекатурина Т. Л., Миронов О. Г. Аккумуляция углеводородов нефти двустворчатыми моллюсками Mytilus galloprovincialis L. // Гидробиологический журнал. 1987. Т. 23. № 2. С. 71−76.
AMAP (Arctic Monitoring and Assessment Programme). Arctic Oil and Gas. Oslo: Norway, 2007. 57 p.
Bakhmet I. N., Berger V. Ja., Khalaman V. V. The effect of salinity change on the heart rate of Mytilus edulis specimens from different ecological zones // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2005. Vol. 318. N.2. P. 121−126. doi: 10.1016/j.jembe.2004.11.23.
Bakhmet I. N., Fokina N. N., Ruokolainen T. R. Changes of heart rate and lipid composition in Mytilus edulis and Modiolus modiolus caused by crude oil pollution and low salinity effects // Xenobiotics. 2021. Vol. 11. P. 46−60. doi: 10.3390/jox11020004.
Baussant T., Sanni S., Jonsson G., Skadsheim A., Børseth J. F. Bioaccumulation of polycyclic aromatic compounds: 1. Bioconcentration in two marine species and in semipermeable membrane devices during chronic exposure to dispersed crude oil // Environ. Toxicol. Chem. 2001. Vol. 20. No. 6. P. 1175−1184.
Berger V. Ja., Kharazova A. D. Mechanisms of salinity adaptations in marine mollusks // Hydrobiol. 1997. Vol. 305. P. 115−126. doi: 10.1023/A:1003023322263.
Borja A., Belzunce M. E., Garmendia J. M., Rodriguez J. G.,Solaun O., Zorita I. Impact of pollutants on coastal and benthic marine communities. In: Ecological impacts of toxic chemicals. 2011. Bentham Science Publisher Ltd. P.165−186. doi: 10.2174/978160805121211101010165.
Burgos-Aceves M. A., Faggio C. An approach to the study of the immunity functions of bivalve haemocytes: Physiology and molecular aspects // Fish and Shellfish Immunology. 2017. Vol. 67. P. 513−517. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.06.042
Cajaraville M. P., Pal S. G. Morphofunctional study of the haemocytes of the bivalve mollusc Mytilus galloprovincialis emphasis on the endolysosomal compartment // Cell Struct. Funct. 1995. Vol. 20. N 5. P. 355−367. doi: 10.1247/csf.20.355.
Cajaraville M. P., Abascal I., Etxeberria M., Marigómez I. Lysosomes as cellular markers of environmental pollution: Time- and dose-dependent responses of the digestive lysosomal system of mussels after petroleum hydrocarbon exposure // Environmental Toxicology. 1995. Vol. 10. Is. 1. P. 1−8. https://doi.org/10. 1002/tox.2530100102.
Cajaraville M. P., Bebianno M. J., Blasco J., Porte C., Sarasquete C., Viarengo A. The use of biomarkers to assess the impact of pollution in coastal environments of the Iberian Peninsula: a practical approach // Sci. Total Environ. 2000. Vol. 247. N. 2−3. P. 295−311. doi: 10. 1016/s0048-9697(99)00499-4
De la Ballina N. R., Maresca F., Cao A., Villalba A. Bivalve haemocyte subpopulations: a review // Front. Immunol. 2022. Vol. 13: 826255. doi: 10.3389/fimmu.2022.826255.
Dyrynda E. A., Law R. J., Dyrynda P. E. J., Kelly C. A., Pipe R. K., Ratcliffe N. A. Changes in immune parameters of natural mussel Mytilus edulis populations following a major oil spill (“Sea Empress”, Wales, UK). Marine Ecology Progress Series. 2000. Vol. 206. P. 155−170. doi: 10.3354/meps206155.
Fokina N. N., Ruokolainen T. R., Nemova N. N. The effect of intertidal habitat on seasonal lipid composition changes in blue mussels, Mytilus edulis L., from the White Sea // Polar Record. 2018. Vol. 54. Is. 2. P. 133−151. https// doi.org/ 10.1017/s0032247418000293.
Fokina N. N., Bakhmet I. N., Shklyarevich G. A., Nemova N. N. Effect of seawater desalination and oil pollution on the lipid composition of blue mussels Mytilus edulis L. from the White Sea // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2014. Vol. 110. P. 103−109. doi: 10.1016/j.ecoenv.2014.08.010.
Garmendia L., Izagirre U., Cajaraville M. P., Marigómez I. Application of a battery of biomarkers in mussel digestive gland to assess long-term effects of the Prestige oil spill in Galicia and Bay of Biscay: lysosomal responses // J. Environ. Monit. 2011. Vol. 13. P. 901–914.
Hylland K, Tollefsen K, Ruus A, Jonsson G, Sundt RC, Sanni S, Utvik T I R, Johnsen S, Nilssen I, Pinturier L, Balk L, Barsiene J, Marigomez I, Feist S W, Borseth J F Water column monitoring near oil installations in the North Sea 2001-2004 // Mar Pollut Bull. 2008. Vol. 56. Is. 3. P. 414–429. https:// doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.11.004.
Izagirre U., Marigómez I. Lysosomal enlargement and lysosomal membrane destabilisation in mussel digestive cells measured by an integrative index // Environ. Pollut. 2009. Vol. 157. P. 1544–1553.
Kahovcova J., Odavic R. A simple method of the quantitative analysis of phospholipids separated by thin layer chromatography // J. Chromatogr. 1969. Vol. 40. P. 90−96.
Livingstone D. R., Pipe R. K. Mussel and environmental contaminants: molecular and cellular aspects / Ed. E. Gosling. The mussel Mytilus: ecology, physiology, genetics and culture. Amsterdam; New York: Elsevier, 1992. P. 425–456.
Lysenko L., Sukhovskaya I., Borvinskaya E., Krupnova M., Kantserova N., Bakhmet I., Nemova N. Detoxication and protein quality control markers in the mussel Mytilus edulis (Linnaeus) exposed to crude oil: salinity-induced modulation // Estuarine, Coastal and Shelf Science. 2015. http://dx.doi.org/10.1016/j.ecss.2015.10.006.
Marigómez, I., Garmendia, L., Soto, M., Orbea A., Izagirre U., Cajaraville M. P. Marine ecosystem health status assessment through integrative biomarker indices: a comparative study after the Prestige oil spill “Mussel Watch” // Ecotoxicology. 2013 Vol. 22. P. 486–505. https://doi.org/10.1007/s10646-013-1042-4
Mearns A. J., O′Connor Th. P., Lauenstein G. G., Relevance of the National “Mussel Watch” program to scafood fisheries management tissues during oil spill response // Proceedings of the 1999 International Oil Spill Conference. Washington, D.C.: API, 1999.
Moore M. N. Autophagy as second level protective process in conferring resistance to environmentally induced oxidative stress // Autophagy. 2008. Vol. 4. N. 2. P. 254−256. doi: 10.4161/auto.5528.
Moore M. N., Allen J. I., Sommerfield P. J. Autophagy: Role in surviving environmental stress // Mar. Environ. Res. 2006. Vol. 62. P. S420−425.
Moore M. N., Viarengo A., Donkin P., Hawkins A. J. Autophagic and lysosomal reactions to stress in the hepatopancreas of blue mussels // Aquat. Toxicol. 2007. Vol. 84. P. 80−91.
http://dx.doi.org/10.1016/j.aquatox.2007.06.007.
NAS (National Academy of Sciences). Oil in the sea III: Inputs fates and effects. National Research Council. Washington, D.C.: The National Academies Press, 2003. 265 p.
Naz H., Islam A., Waheed A., Sly W. S., Ahmad F., Hassan I. Human β-glucuronidase: structure, function, and application in enzyme replacement therapy // Rejuvenation Res. 2013. Vol. 16. Is. 5. P. 352−363.
Turja R., Sanni S., Stankevičiuté M. et al. Biomarker responses and accumulation of polycyclic aromatic hydrocarbons in Mytilus trossulus and Gammarus oceanicus during exposure to crude oil // Environ. Sci. Pollut. Res. 2020. Vol. 27. P. 15498–15514.
Turja R., Sourinsuo A, Budzinski H., Devier M. H., Lehtonen K. K. Biomarker responses and accumulation of hazardous substances in mussels (Mytilus trossulus) transplanted along a pollution gradient close to an oil terminal in Gulf of Finland (Baltic Sea) // Compar. Biochem. Physiol. Part C. Toxicology and Pharmacology. 2013. Vol. 157. Is. 1. P. 80–92.
Viarengo A., Lowe D., Bolognesi C., Fabbri E., Köehler A. The use of biomarkers in biomonitoring: a 2-tier approach assessing the level of pollutant-induced stress syndrome in sentinel organisms // Comp. Biochem. Physiol. 2007. Vol. 146. P. 281–300.
Winchester B. Lysosomal metabolism of glycoproteins // Glycobiol. 2005. Vol. 15. No. 6. P. 1R–15R. doi:10.1093/glycob/cwi041.
References
AMAP (Arctic Monitoring and Assessment Programme). Arctic Oil and Gas. Oslo: Norway, 2007. 57 p.
Bakhmet I. N., Berger V. Ja., Khalaman V. V. The effect of salinity change on the heart rate of Mytilus edulis specimens from different ecological zones // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2005. Vol. 318. N.2. P. 121−126. doi: 10.1016/j.jembe.2004.11.23.
Bakhmet I. N., Fokina N. N., Ruokolainen T. R. Changes of heart rate and lipid composition in Mytilus edulis and Modiolus modiolus caused by crude oil pollution and low salinity effects // Xenobiotics. 2021. Vol. 11. P. 46−60. doi: 10.3390/jox11020004.
Bakhmet I. N., Fokina N. N., Nefyodova Z. A., Ruokolainen T. R., Nemova N. N. Blue mussels Mytilus edulis L. in the White Sea as bioindicators under diluted oil impact // Trudy KarNTs RAN [Trans. KarRC RAS]. 2012. No. 2. P. 38−46.
Barrett A. J., Heat M. F. Lizosomalnye fermenty. Lyzosomy. Metody issledovaniya. [Lysosomal enzymes. In: Lysosomes, a Laboratory Handbook. Ed. J. T. Dingle, North-Holland Publishing Company, Amsterdam, New York, Oxford, 1977]. Moskow: Mir, 1980. P. 25−156.
Baussant T., Sanni S., Jonsson G., Skadsheim A., Børseth J. F. Bioaccumulation of polycyclic aromatic compounds: 1. Bioconcentration in two marine species and in semipermeable membrane devices during chronic exposure to dispersed crude oil // Environ. Toxicol. Chem. 2001. Vol. 20. No. 6. P. 1175−1184.
Berger V. Ya. Adaptations of marine mollusks to changes in the salinity of the environment. Leningrad: Nauka, 1986. 214 p.
Berger V. Ya., Kharazova A. D. Mechanisms of salinity adaptations in marine mollusks // Hydrobiol. 1997. Vol. 305. P. 115−126. doi: 10.1023/A:1003023322263.
Borja A., Belzunce M. E., Garmendia J. M., Rodriguez J. G.,Solaun O., Zorita I. Impact of pollutants on coastal and benthic marine communities. In: Ecological impacts of toxic chemicals. 2011. Bentham Science Publisher Ltd. P.165−186. doi: 10.2174/978160805121211101010165.
Burgos-Aceves M. A., Faggio C. An approach to the study of the immunity functions of bivalve haemocytes: Physiology and molecular aspects // Fish and Shellfish Immunology. 2017. Vol. 67. P. 513−517. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.06.042
Cajaraville M. P., Pal S. G. Morphofunctional study of the haemocytes of the bivalve mollusc Mytilus galloprovincialis emphasis on the endolysosomal compartment // Cell Struct. Funct. 1995. Vol. 20. N 5. P. 355−367. doi: 10.1247/csf.20.355.
Cajaraville M. P., Abascal I., Etxeberria M., Marigómez I. Lysosomes as cellular markers of environmental pollution: Time- and dose-dependent responses of the digestive lysosomal system of mussels after petroleum hydrocarbon exposure // Environmental Toxicology. 1995. Vol. 10. Is. 1. P. 1−8. https://doi.org/10. 1002/tox.2530100102.
Cajaraville M. P., Bebianno M. J., Blasco J., Porte C., Sarasquete C., Viarengo A. The use of biomarkers to assess the impact of pollution in coastal environments of the Iberian Peninsula: a practical approach // Sci. Total Environ. 2000. Vol. 247. N. 2−3. P. 295−311. doi: 10. 1016/s0048-9697(99)00499-4.
De la Ballina N. R., Maresca F., Cao A., Villalba A. Bivalve haemocyte subpopulations: a review // Front. Immunol. 2022. Vol. 13: 826255. doi: 10.3389/fimmu.2022.826255.
Divavin I. A., Kopytov Yu. P., Beloivanenko V. N. Metabolic processes in mussel tissues during adaptation to hydrocarbon intoxication and changes in environmental conditions // Izvestiya AN SSSR. Biological series. 1989. No. 2. S. 204−214.
Dyrynda E. A., Law R. J., Dyrynda P. E. J., Kelly C. A., Pipe R. K., Ratcliffe N. A. Changes in immune parameters of natural mussel Mytilus edulis populations following a major oil spill (“Sea Empress”, Wales, UK). Marine Ecology Progress Series. 2000. Vol. 206. P. 155−170. doi: 10.3354/meps206155.
Fokina N. N., Bakhmet I. N., Nemova N. N. Cooperative effect of crude oil and low salinity on the digestive glands lipid composition of the White Sea blue mussels Mytilus edulis // Proc. Zool. Inst. RAS. 2016. Vol. 320. No. 3. S. 357−366.
Fokina N. N., Ruokolainen T. R., Nemova N. N. The effect of intertidal habitat on seasonal lipid composition changes in blue mussels, Mytilus edulis L., from the White Sea // Polar Record. 2018. Vol. 54. Is. 2. P. 133−151. https// doi.org/ 10.1017/s0032247418000293.
Fokina N. N., Bakhmet I. N., Shklyarevich G. A., Nemova N. N. Effect of seawater desalination and oil pollution on the lipid composition of blue mussels Mytilus edulis L. from the White Sea // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2014. Vol. 110. P. 103−109. doi: 10.1016/j.ecoenv.2014.08.010.
Garmendia L., Izagirre U., Cajaraville M. P., Marigómez I. Application of a battery of biomarkers in mussel digestive gland to assess long-term effects of the Prestige oil spill in Galicia and Bay of Biscay: lysosomal responses // J. Environ. Monit. 2011. Vol. 13. P. 901–914.
Gubler E. V., Genkin A. A. Primenenie kriteriev neparametricheskoj statistiki dlya ocenki razlichij grupp nablyudenij v medico-biologicheskih issledovaniyah [Application of criteria of nonparametric statistics for estimating differences between two study groups in biomedical research ]. Moskow: Meditsina, 1969. 29 p.
Hylland K, Tollefsen K, Ruus A, Jonsson G, Sundt RC, Sanni S, Utvik T I R, Johnsen S, Nilssen I, Pinturier L, Balk L, Barsiene J, Marigomez I, Feist S W, Borseth J F Water column monitoring near oil installations in the North Sea 2001-2004 // Mar Pollut Bull. 2008. Vol. 56. Is. 3. P. 414–429. https:// doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.11.004.
Izagirre U., Marigómez I. Lysosomal enlargement and lysosomal membrane destabilisation in mussel digestive cells measured by an integrative index // Environ. Pollut. 2009. Vol. 157. P. 1544–1553.
Kahovcova J., Odavic R. A simple method of the quantitative analysis of phospholipids separated by thin layer chromatography // J. Chromatogr. 1969. Vol. 40. P. 90−96.
Klishin A. Yu., Kanieva N. A., Bazhaeva O. V., Fedorova N. A. Violations of organs and tissues of mollusks of the genus Unio under the influence of oil // Proceedings of VNIRO. 2016. Vol. 162. S. 82−86.
Korshunova T. Yu., Loginov O. N. Oil pollution of water environment: features, influence on various objects of hydrosphere, main methods for cleaning // Ecobiotech. 2019. Vol. 2. No. 2. S. 157–174.
Levitskiy A. P., Barabash R. D., Konovets V. M. Sezonnyye osobennosti aktivnosti ribonukleazy i α-amilazy slyuny i slyunnykh zhelez u krys linii Vistar [Seasonal features of ribonuclease and α-amylase activity of saliva and salivary glands in Wistar rats]. Leningrad: Nauka, 1973. P. 192−195.
Livingstone D. R., Pipe R. K. Mussel and environmental contaminants: molecular and cellular aspects / Ed. E. Gosling. The mussel Mytilus: ecology, physiology, genetics and culture. Amsterdam; New York: Elsevier, 1992. P. 425–456.
Lysenko L., Sukhovskaya I., Borvinskaya E., Krupnova M., Kantserova N., Bakhmet I., Nemova N. Detoxication and protein quality control markers in the mussel Mytilus edulis (Linnaeus) exposed to crude oil: salinity-induced modulation // Estuarine, Coastal and Shelf Science. 2015. http://dx.doi.org/10.1016/j.ecss.2015.10.006.
Marigómez, I., Garmendia, L., Soto, M., Orbea A., Izagirre U., Cajaraville M. P. Marine ecosystem health status assessment through integrative biomarker indices: a comparative study after the Prestige oil spill “Mussel Watch” // Ecotoxicology. 2013 Vol. 22. P. 486–505. https://doi.org/10.1007/s10646-013-1042-4
Mearns A. J., O′Connor Th. P., Lauenstein G. G., Relevance of the National “Mussel Watch” program to scafood fisheries management tissues during oil spill response // Proceedings of the 1999 International Oil Spill Conference. Washington, D.C.: API, 1999.
Moore M. N. Autophagy as second level protective process in conferring resistance environmentally induced oxidative stress // Autophagy. 2008. Vol. 4. N. 2. P. 254−256. doi: 10.4161/auto.5528.
Moore M. N., Allen J. I., Sommerfield P. J. Autophagy: Role in surviving environmental stress // Mar. Environ. Res. 2006. Vol. 62. P. S420−425.
Moore M. N., Viarengo A., Donkin P., Hawkins A. J. Autophagic and lysosomal reactions to stress in the hepatopancreas of blue mussels // Aquat. Toxicol. 2007. Vol. 84. P. 80−91.
http://dx.doi.org/10.1016/j.aquatox.2007.06.007.
NAS (National Academy of Sciences). Oil in the sea III: Inputs fates and effects. National Research Council. Washington, D.C.: The National Academies Press, 2003. 265 p.
Naz H., Islam A., Waheed A., Sly W. S., Ahmad F., Hassan I. Human β-glucuronidase: structure, function, and application in enzyme replacement therapy // Rejuvenation Res. 2013. Vol. 16. Is. 5. P. 352−363.
Nemirovskaya I. A. Neft′ v okeane (zagryazneniye i prirodnyye potoki) [Oil in the ocean (pollution and natural flows)]. Moscow: Nauchnyy mir [Scientific world], 2013. 432 p.
Nemova N. N., Vysotskaya R. U. Biochemical indication of fish state. Moskow: Nauka, 2004. 216 p.
Patin S. A. Oil and continental shelf ecology. In two volumes. Vol. 1. Offshore oil and gas industry: actual situation, prospects, factors of impact. Moscow: VNIRO Publishing. 2017. 326 p.
Pokrovsky A. A., Archakov A. I. Metody razdeleniya i fermentnoy identifikatsii subkletochnykh fraktsiy [Methods of separation and enzymatic identification of subcellular fractions] // Sovremennyye metody v biokhimii [Modern methods in biochemistry]. Moskow: Meditsina, 1968. P. 5−59.
Pokrovsky A. A., Kravchenko L. V, Tutelyan V. A. Issledovaniye aktivnosti fermentov lizosom pri deystvii aflatoksina I mitomitsina C [Study of the activity of lysosomal enzymes under the action of aflatoxin and mitomycin C] // Biokhimiya [Biochemistry] 1971. Vol. 36. Is. 4. P. 690−696.
Siraeva I. N., Lyapina N. K. Sulfur compounds of oils of various types // Bashkir Chemical Journal. 2011. Vol. 18. No. 1. S. 135−139.
Skidchenko V. S., Vysotskaya R. U., Nemova N. N. The range of acid deoxyribonuclease isoforms in the tissues of Mytilus edulis mussels in model experiments with petroleum hydrocarbon poisoning // Trudy KarNTs RAN [Trans. KarRC RAS]. 2012. No. 2. S. 131−138.
Turja R., Sanni S., Stankevičiuté M. et al. Biomarker responses and accumulation of polycyclic aromatic hydrocarbons in Mytilus trossulus and Gammarus oceanicus during exposure to crude oil // Environ. Sci. Pollut. Res. 2020. Vol. 27. P. 15498–15514.
Turja R., Sourinsuo A, Budzinski H., Devier M. H., Lehtonen K. K. Biomarker responses and accumulation of hazardous substances in mussels (Mytilus trossulus) transplanted along a pollution gradient close to an oil terminal in Gulf of Finland (Baltic Sea) // Compar. Biochem. Physiol. Part C. Toxicology and Pharmacology. 2013. Vol. 157. Is. 1. P. 80–92.
Vashchenko M. A. Pollution of the Peter the Great Bay of the Sea of Japan and its biological consequences // Biology of the Sea [Russian Journal of Marine Biology]. 2000. Vol.26. No. 3. S. 149–159.
Viarengo A., Lowe D., Bolognesi C., Fabbri E., Köehler A. The use of biomarkers in biomonitoring: a 2-tier approach assessing the level of pollutant-induced stress syndrome in sentinel organisms // Comp. Biochem. Physiol. 2007. Vol. 146. P. 281–300.
Vorobyov D. S. Vliyaniye nefti I nefteproduktov na makrozoobentos [Influence of oil and oil products on macrozoobenthos] // Izvestiya Tomskogo politekhnicheskogo universiteta [Bulletin of the Tomsk Polytechnic University]. 2006. Vol. 309. No. 3. S. 42–45.
Vorobyov D. S. Biologicheskiye osnovy ochistki donnykh otlozheniy vodnykh obʺyektov ot nefti I nefteproduktov [Biological bases for cleaning bottom sediments of water bodies from oil and oil products]: DSc. (Dr. of Biol.) thesis. Tomsk. 2013. 46 p.
Vysotskaya R. U., Nemova N. N. Lizosomy i lizosomal'nye fermenty ryb [Fish lysosomes and lysosomal enzymes]. Moskow: Nauka, 2008. 284 p.
Winchester B. Lysosomal metabolism of glycoproteins // Glycobiol. 2005. Vol. 15. No. 6. P. 1R–15R. doi:10.1093/glycob/cwi041.
DOI: http://dx.doi.org/10.17076/eco1719
Ссылки
- На текущий момент ссылки отсутствуют.
© Труды КарНЦ РАН, 2014-2019