ФЕРМЕНТЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ СИСТЕМЫ – ИНДИКАТОРЫ РАЗНЫХ СЦЕНАРИЕВ КСИЛОГЕНЕЗА: В РАННЕМ ОНТОГЕНЕЗЕ И ВО ВЗРОСЛОМ СОСТОЯНИИ

Ксения Михайловна Никерова, Наталия Алексеевна Галибина, Юлия Леонидовна Мощенская, Людмила Людвиговна Новицкая, Марина Николаевна Подгорная, Ирина Николаевна Софронова, Kseniya Nikerova, Natalia Galibina, Yuliya Moshchenskaya, Ludmila Novitskaya, Marina Podgornaya, Irina Sofronova

Аннотация


Впервые проведено исследование активности комплекса ферментов антиоксидантной системы (АОС) (супероксиддисмутазы (СОД), каталазы (КАТ), пероксидазы (ПОД)) и полифенолоксидазы (ПФО) на разных этапах онтогенеза при формировании нормальной и аномальной структуры древесины: у сеянцев (6- и 11‑недельных) и у взрослых растений разных форм березы повислой. Показано, что в возрасте 6 недель сеянцы обычной березы повислой (Betula pendula Roth var. pendula) и карельской березы (Betula pendula Roth var. carelica (Mercl.) Hamet-Ahti) не имеют внешних отличий, однако сеянцы Betula pendula Roth var. pendula показывают более высокую активность ферментов вторичного метаболизма (ПОД и ПФО) по сравнению с сеянцами Betula pendula var. carelica. Уже к возрасту 11 недель происходит изменение метаболических стратегий ферментов АОС. У сеянцев березы повислой начинают преобладать ростовые процессы, и растения достигают более высоких морфометрических показателей; напротив, у сеянцев карельской березы наблюдаются более высокие значения ферментов АОС. У взрослых растений карельской березы аномальный ксилогенез, как уже было отмечено нами ранее, путем взаимосвязанной цепочки метаболических реакций находит отражение в более высокой активности ПОД, а также, что отмечено впервые, более высокой активности СОД, КАТ и ПФО. Важно, что переориентация АОС на процессы вторичного метаболизма наблюдается уже в возрасте 11 недель, когда внешние видимые признаки аномального ксилогенеза отсутствуют. Выдвигается гипотеза, что активность ферментов АОС может являться тест-признаком для диагностики аномального ксилогенеза у карельской березы уже на самых ранних этапах онтогенеза.

 

 


Ключевые слова


ксилогенез; онтогенез; карельская береза; узорчатая древесина; сеянцы; лист; стебель; супероксиддисмутаза; каталаза; пероксидаза; полифенолоксидаза.

Полный текст:

PDF

Литература


Антонова Г. Ф., Стасова В. В. Сезонное развитие флоэмы в стволах сосны обыкновенной // Онтогенез. 2006. Т. 37, № 5. С. 368–383.

Антонова Г. Ф., Стасова В. В. Сезонное развитие флоэмы в стволах лиственницы сибирской // Онтогенез. 2008. Т. 39, № 4. С. 259–272.

Галибина Н. А., Целищева Ю. Л., Андреев В. П., Софронова И. Н., Никерова К. М. Активность пероксидазы в органах и тканях деревьев березы повислой // Ученые записки ПетрГУ. Серия Естественные и технические науки. 2013. Т. 133, № 4. C. 7–13.

Галибина Н. А., Новицкая Л. Л., Красавина М. С., Мощенская Ю. Л. Активность сахарозосинтазы в тканях ствола карельской березы в период камбиального роста // Физиология растений. 2015а. Т. 62, № 3. С. 1–10. doi: 10.7868/S0015330315030057.

Галибина Н. А., Новицкая Л. Л., Красавина М. С., Мощенская Ю. Л. Активность инвертазы в тканях ствола карельской березы // Физиология растений. 2015б. Т. 62, № 6. С. 804–813. doi: 10.7868/S0015330315060068.

Галибина Н. А., Мошкина Е. В., Никерова К. М., Мощенская Ю. Л., Знаменский С. Р. Активность пероксидазы как индикатор степени узорчатости древесины карельской березы // Лесоведение. 2016а. № 4. С. 294–304.

Галибина Н. А., Новицкая Л. Л., Никерова К. М. Избыток экзогенных нитратов подавляет формирование аномальной древесины у карельской березы // Онтогенез. 2016б. Т. 47, № 2. С. 83–91. doi:10.7868/S047514501602004X.

Донцов В. И., Крутько В. Н., Мрикаев Б. М., Уханов С. В. Активные формы кислорода как система: значение в физиологии, патологии и естественном старении // Труды ИСА РАН. 2006. Т. 19. С. 50–69.

Еремин А. Н., Метелица Д. И. Каталитические свойства каталазы в микроэмульсиях поверхностно-активных веществ в октане // Биохимия. 1996. Т. 61, № 9. С. 1672–1686.

Жукова Л. А., Воскресенская О. Л., Грошева Н. П. Морфологические и физиологические особенности онтогенеза календулы лекарственной (Calendula officinalis L.) в посевах разной плотности // Экология. 1996. T. 2. С. 104–110.

Карасев В. Н., Карасева М. А., Серебрякова Н. Е., Абрамова Д. А. Активность каталазы как показатель жизненного состояния древесных растений в городских условиях // Актуальные проблемы лесного комплекса. 2015. № 43. С. 88–90.

Коровин В. В., Новицкая Л. Л., Курносов Г. А. Структурные аномалии стебля древесных растений. М.: Московский гос. университет леса, 2003. 280 с.

Минибаева Ф. В., Гордон Л. X. Продукция супероксида и активность внеклеточной пероксидазы в растительных тканях при стрессе // Физиология растений. 2003. Т. 50, № 3. С. 459–464.

Мирошниченко О. С. Биогенез, физиологическая роль и свойства каталазы // Biopolymers and Cell. 1992. Т. 8, № 6. С. 3–25. doi: 10.7124/bc.00033C.

Мощенская Ю. Л., Галибина Н. А., Топчиева Л. В., Новицкая Л. Л. Экспрессия генов, кодирующих изоформы сахарозосинтазы, в ходе аномального ксилогенеза карельской березы // Физиология растений. 2017. Т. 64, № 3. С. 301–310. doi: 10.7868/S0015330317030101.

Мощенская Ю. Л., Галибина Н. А., Никерова К. М., Новицкая Л. Л. Активность ферментов диссимиляции сахарозы в раннем онтогенезе разных форм березы повислой // Труды КарНЦ РАН. 2016. Серия Экспериментальная биология. № 11. С. 78–87. doi: 10.17076/eb461.

Никерова К. М., Галибина Н. А., Мощенская Ю. Л., Новицкая Л. Л., Подгорная М. Н., Софронова И. Н. Каталазная активность в листовом аппарате у сеянцев березы повислой разных форм (Betula pendula Roth): var. pendula и var. carelica (Mercklin) // Труды КарНЦ РАН. 2016. Серия Экспериментальная биология. № 11. С. 68–77. doi: 10.17076/eb460.

Никерова К. М., Галибина Н. А. Влияние нитратного азота на пероксидазную активность в тканях Betula pendula Roth var. pendula и B. pendula var. carelica (Mercklin) // Сибирский лесной журнал. 2017. № 1. С. 15–24.

Никерова К. М., Галибина Н. А. Мощенская Ю. Л., Новицкая Л. Л. Ферменты антиоксидантной системы в разных сценариях ксилогенеза // Молекулярные аспекты редокс-метаболизма растений. Роль активных форм кислорода в жизни растений: материалы II Междунар. симпозиума (Уфа, 26 июня–1 июля 2017 г.). Уфа: Первая типография, 2017а. C. 188-192.

Никерова К. М., Галибина Н. А. Мощенская Ю. Л., Новицкая Л. Л. Древесные растения, произрастающие на разных по уровню плодородия почвах, отличаются по активности ферментов АОС // Годичное собрание общества физиологов растений России. Экспериментальная биология растений: фундаментальные и прикладные аспекты: тезисы докл. Всерос. конф. (Крым, Судак, 18–24 сентября 2017 г.). Москва, 2017б. C. 242.

Никишов В. Д. Комплексное использование древесины. М.: Лесная промышленность, 1985. 264 с.

Новицкая Л. Л. Карельская береза: механизмы роста и развития структурных аномалий. Петрозаводск: Verso, 2008. 144 с.

Новицкая Л. Л., Галибина Н. А., Никерова К. М. Транспорт и запасание сахаров во флоэме Betula pendula Roth var. pendula и var. carelica // Труды КарНЦ РАН. 2015. Серия Экспериментальная биология. № 11. С. 35–47. doi: 10.17076/eb216.

Половникова М. Г., Воскресенская О. Л. Активность компонентов антиоксидантной защиты и полифенолоксидазы у газонных растений в онтогенезе в условиях городской среды // Физиология растений. 2008. Т. 55, № 5. С. 777–785.

Прадедова Е. В., Ишеева О. Д., Саляев Р. К. Супероксиддисмутаза вакуолей клеток растений // Биологические мембраны: Журнал мембранной и клеточной биологии. 2009. Т. 26, № 1. С. 21–30.

Прадедова Е. В., Ишеева О. Д., Саляев Р. К. Ферменты антиоксидантной защиты вакуолей клеток корнеплодов столовой свеклы // Физиология растений. 2011. Т. 58, № 1. С. 40–48. doi: 10.7868/S0015330315030057.

Синькевич М. С., Дерябин А. Н., Трунова Т. И. Особенности окислительного стресса у растений картофеля с измененным углеводным метаболизмом // Физиология растений. 2005. Т. 56, № 2. С. 186–192.

Шелякин М. А., Захожий И. Г., Головко Т. К. Онтогенетические аспекты дыхания растений (на примере Rubus chamaemorus L.) // Физиология растений. 2016. Т. 63, № 1. С. 98–107. doi: 10.7868/S0015330316010164.

Alici E. H., Arabaci G. Determination of SOD, POD, PPO and CAT Enzyme Activities in Rumex obtusifolius L. ARRB. 2016. Vol. 11, no. 3. Р. 1–7. doi: 10.9734/ARRB/2016/29809

Barnett J., Jeronimidis G. Wood quality and its biological basis. Blackwell Publishing Ltd., 2003. 226 p.

Borges C. V., Minatel I. O., Gomez-Gomez H. A., Lima G. P. P. Medicinal Plants: Influence of Environmental Factors on the Content of Secondary Metabolites / Medicinal Plants and Environmental Challenges. Eds. M. Ghorbanpour, A. Varma, Cham: Springer, 2017. P. 259–278. doi: 10.1007/978-3-319-68717-9_15.

Burton S. G. Oxidizing enzymes as biocatalysts // Trends Biotechnol. 2003. Vol. 21, no. 12. P. 543–549. doi: 10.1016/j.tibtech.2003.10.006.

Chen Y., Zhang M., Chen T., Zhang Y., An L. The relationship between seasonal changes in anti-oxidative system and freezing tolerance in the leaves of evergreen woody plants of Sabina // S. Afr. J. Bot. 2006. Vol. 72, no. 2. P. 272–279. doi: org/10.1016/j.sajb.2005.09.004.

Couee I., Sulmon C., Gouesbet G., El Amrani A. Involvement of soluble sugars in reactive oxygen species balance and responses to oxidative stress in plants // J. Exp. Bot. 2006. Vol. 57, no. 3. P. 449–459. doi:10.1093/jxb/erj027.

Fernández-García N., Carvajal M., Olmos E. Graft union formation in tomato plants. Peroxidase and catalase involvement // Ann. Bot. 2004. Vol. 93, no. 1. P. 53–60. doi: 10.1093/aob/mch014.

Fukuda H. Xylogenesis: initiation, progression, and cell death // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. Vol. 47, no. 1. P. 299–325. doi: 10.1146/annurev.arplant.47.1.299.

Gaspar Th. The concept of cancer in in vitro plant cultures and the implication of habituation to hormones and hyperhydricity // Plant Tissue Cult. Biotechnol. 1995. Vol. 1. P. 126–136.

Hu M., Shi Z., Zhang Z., Zhang Y., Li H. Effects of exogenous glucose on seed germination and antioxidant capacity in wheat seedlings under salt stress // Plant Growth Regul. 2012. Vol. 68. P. 177–188. doi: 10.1007/s10725-012-9705-3.

Iqbal A., Wang T., Wu G., Tang W., Zhu C., Wang D., Li Yi., Wang H. Physiological and transcriptome analysis of heteromorphic leaves and hydrophilic roots in response to soil drying in desert Populus euphratica // Scientific Reports. 2017. Vol. 7, no. 1. Article number 12188. doi: 10.1038/s41598-017-12091-2.

Jakovljević D. Z., Stanković M. S., Topuzović M. D. Seasonal variability of Chelidonium majus L. secondary metabolites content and antioxidant activity // EXCLI J. 2013. Vol. 12. P. 260–268.

Laukkanen H., Haggman H., Kontunen-Soppela S., Hohtola A. Tissue browning of in vitro culture of Scots pine: role of peroxidase and polyphenol oxidase // Physiol. Plant. 1999. Vol. 106. P. 337–343. doi: 10.1034/j.1399-3054.1999.106312.x.

Novitskaya L. L., Kushnir F. V. The role of sucrose in regulation of trunk tissue development in Betula pendula Roth // J. Plant Growth Regul. 2006. Vol. 25, no. 1. P. 18–29. doi: 10.1007/s00344–004–0419–2.

Olson P. O., Varner J. E. Hydrogen peroxide and lignification // Plant J. 1993. Vol. 4, no. 5. P. 887–892. doi: 10.1046/j.1365-313X.1993.04050887.x.

Ros Barcelo A. Xylem parenchyma cells deliver the H2O2 necessary for lignification in differentiating xylem vessels // Planta. 2005. Vol. 220, no. 5. P. 747–756. doi: 10.1007/s00425-004-1394-3.

Savidge R. A. Xylogenesis, genetic and environmental regulation // JAWA J. 1996. Vol. 17, no. 3. P. 269–310. doi: 10.1163/22941932-90001580.

Srivastava O. P., Van Huystee R. B. An Interrelationship among Peroxidase, IAA Oxidase and Polyphenol Oxidase from Peanut Cells // Can. J. Bot. 1977. Vol. 55, no. 20. P. 2630–2635.

Thipyapong P., Hunt M. D., Steffens J. C. Antisense downregulation of polyphenol oxidase results in enhanced disease susceptibility // Planta. 2004. Vol. 220, no. 1. P. 105–107. doi: 10.1007/s00425-004-1330-6.

Toivonen P. M. A. Brummell D. A. Biochemical bases of appearance and texture changes in fresh-cut fruit and vegetables // Postharv. Biol. and Technol. 2008. Vol. 48, no. 1. P. 1–14. doi: 10.1016/j.postharvbio.2007.09.004.

Wellen K. E, Thompson C. B. Cellular metabolic stress: Considering how cells respond to nutrient excess // Mol. Cell. 2010. Vol. 40, no. 2. P. 323–332. doi:10.1016/j.molcel.2010.10.004.

Willekens H., Inzé D., Van Montagu M., Van Camp W. Catalases in plants // Molecular Breeding. 1995. Vol. 1, no. 3. P. 207–228. doi: 10.1007/BF02277422.

References in English

Antonova G. F., Stasova V. V. Seasonal development

of phloem in Scots pine stems. Russ. J. Dev. Biol. 2006. Vol. 37, no. 5. P. 306–320. doi: 10.1134/

S1062360406050043

Antonova G. F., Stasova V. V. Seasonal development

of phloem in Siberian larch stems. Russ. J. Dev. Biol. 2008. Vol. 38, no. 4. P. 207–218. doi: 10.1134/

S1062360408040024

Dontsov V. I., Krutko V. N., Mrikaev B. M., Ukhanov S. V. Aktivnye formy kisloroda kak sistema: znachenie v fiziologii, patologii i estestvennom starenii [Reactive oxygen species as a system: the role in physiology, pathology, and natural ageing]. Tr. Inst. sist. analiza RAN [Proceed. Inst. for Systems Analysis RAS]. 2006. Vol. 19. P. 50–69.

Eremin A. N., Metelitsa D. I. Kataliticheskie svoistva katalazy v mikroemul’siyakh poverkhnostno-aktivnykh veshchestv v oktane [Catalytic properties of catalase in microemulsions of surface-active agents in octane]. Biokhim. [Biochem.]. 1996. Vol. 61, no. 9. P. 1672–1686.

Galibina N. A., Tselishcheva Yu. L., Andreev V. P., Sofronova I. N., Nikerova K. M. Aktivnost’ peroksidazy v organakh i tkanyakh derev’ev berezy povisloi [Peroxidase activity in organs and tissues of silver birch trees]. Uch. zapiski PetrGU. Ser. Estestvennyie i tehnicheskie nauki [Proceed. Petrozavodsk St. Univ. Nat. Tech. Sci. Ser.]. 2013. Vol. 133, no. 4. P. 7–13.

Galibina N. A., Novitskaya L. L., Krasavina M. S., Moshchenskaya Yu. L. Activity of sucrose synthase in trunk tissues of Karelian birch during cambial growth. Russ. J. Plant Physiol. 2015a. Vol. 62, no. 3. P. 381–389.

doi: 10.1134/S102144371503005X

Galibina N. A., Novitskaya L. L., Krasavina M. S.,

Moshchenskaya Yu. L. Invertase activity in trunk tissues of Karelian birch. Russ. J. Plant Physiol. 2015b. Vol. 62, no. 6. P. 804–813. doi: 10.1134/S1021443715060060

Galibina N. A., Moshkina E. V., Nikerova K. M., Moshchenskaya

Yu. L., Znamenskii S. R. Aktivnost’ peroksidazy kak indikator stepeni uzorchatosti drevesiny karel’skoi berezy [Peroxydase activity indicates veining of curly birch]. Lesovedenie [Russ. J. Forest Sci.]. 2016a. No. 4. P. 294–304.

Galibina N. A., Novitskaya L. L., Nikerova K. M. Excess of exogenous nitrates inhibits formation of abnormal wood in the Karelian birch. Russ. J. Dev. Biol. 2016b. Vol. 47, no. 2. P. 69–76. doi: 10.1134/S106236041602003X

Garifzyanov A. R., Zhukov N. N., Ivanishchev V. V.

Obrazovanie i fiziologicheskie reaktsii aktivnykh form kisloroda v kletkakh rastenii [Formation and physiological reactions of oxygen active forms in plants cells]. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya [Modern Problems of Science and Education]. 2011. No. 2. URL: http://www.science-education.ru/96–4600 (accessed: 01.02.2018).

Karasev V. N., Karaseva M. A., Serebryakova N. E., Abramova D. A. Aktivnost’ katalazy kak pokazatel’ zhiznennogo sostoyaniya drevesnykh rastenii v gorodskikh usloviyakh [Catalase activity as an indicator of the vital state of woody plants in urban environments]. Aktual’nye problemy les. kompleksa [Topica Iss. of Timber Complex]. 2015. No. 43. P. 88–90.

Korovin V. V., Novitskaya L. L., Kurnosov G. A. Structurnye anomalii steblya drevesnykh rastenii [Structural abnormalities of woody plants stems]. Moscow: Moscow State Forest University, 2003. 280 p.

Minibaeva F. V., Gordon L. Kh. Superoxide Production and the Activity of Extracellular Peroxidase in Plant Tissues under Stress Conditions. Russ. J. Plant Physiol. 2003. Vol. 50, no. 3. P. 168–174. doi: 10.1023/A:1023842808624

Moshchenskaya Yu. L., Galibina N. A., Nikerova K. M., Novitskaya L. L. Aktivnost’ fermentov dissimilyatsii sakharozy v rannem ontogeneze raznykh form berezy povisloi [Activity of sucrose dissimilating enzymes in early ontogeny in different forms of silver birch]. Trudy KarNTs RAN [Trans. KarRC RAS]. 2016. No. 11. P. 78–87. doi: 10.17076/eb461

Moshchenskaya Yu. L., Galibina N. A., Topchieva L. V., Novitskaya L. L. Expression of genes encoding sucrose synthase isoforms during anomalous xylogenesis in Karelian birch. Russ. J. Plant Physiol. 2017. Vol. 64, no. 4. P. 616–624. doi: 10.1134/S1021443717030104

Nikerova K. M., Galibina N. A. Vliyanie nitratnogo azota na peroksidaznuyu aktivnost’ v tkanyakh Betula pendula Roth var. pendula i B. pendula var. carelica (Mercklin) [The influence of nitrate on the peroxidase activity in tissues of Betula pendula Roth var. pendula and B. pendula var. carelica (Mercklin)]. Sibirskii lesnoi zhurn. [Siberian J. Forest Sci.]. 2017. No. 1. P. 15–24.

Nikerova K. M., Galibina N. A., Moshchenskaya Yu. L.,

Novitskaya L. L., Podgornaya M. N., Sofronova I. N.

Katalaznaya aktivnost’ v listovom apparate u seyantsev berezy povisloi raznykh form (Betula pendula Roth): var. pendula i var. carelica (Mercklin) [Catalase activity in leaves of silver birch seedlings of different forms (Betula pendula Roth): var. pendula and var. carelica (Mercklin)]. Trudy KarNTs RAN [Trans. KarRC RAS]. 2016. No. 11. P. 78–87. doi: 10.17076/eb460

Nikerova K. M., Galibina N. A., Moshchenskaya Yu. L.,

Novitskaya L. L. Fermenty antioksidantnoi sistemy v raznykh stsenariyakh ksilogeneza [Antioxidant enzymes in different xylogenesis scenarios]. Molekulyarnye aspekty redoks-metabolizma rastenii. Rol’ aktivnykh form kisloroda v zhizni rastenii: mat. II Mezhdunar. simpoziuma (Ufa, 26 iyunya – 1 iyulya 2017 g.). [Molecular Aspects of Plant Redox Metabolism. The Role of Reactive Oxygen Species in Plant Life: Mat. II Int. Symposium (Ufa, June 26 – July 1, 2017)]. Ufa, 2017a. P. 188–192.

Nikerova K. M., Galibina N. A., Moshchenskaya Yu. L.,

Novitskaya L. L. Drevesnye rasteniya, proizrastayushchie na raznykh po urovnyu plodorodiya pochvakh, otlichayutsya po aktivnosti fermentov AOS [Woody plants grown at different fertility level soils differ in enzymatic activity of AOS]. Godichnoe sobr. obshch. fiziologov rastenii Rossii. Eksperimental’naya biol. rast.: fundamental’nye i prikladnye asp.: tezisy dokl. vseros. konf. (Krym, Sudak, 18–24 sent. 2017 g.). [Annual Meeting of the Russ. Society of Plant Physiologists. Experimental Plant Biol.: Fundamental and Applied Aspects: Abs. All-Russ. Conf. (Crimea, Sudak, Sept. 18–24,

]. Moscow, 2017b. 242 p.

Nikishov V. D. Kompleksnoe ispol’zovanie drevesiny[Comprehensive use of wood]. Moscow: Lesn. Prom. Publ., 1985. 264 p.

Novitskaya L. L. Karel’skaya bereza: mekhanizmy rosta i razvitiya strukturnykh anomalii [Karelian birch: mechanisms of growth and development of structural abnormalities]. Petrozavodsk: Verso, 2008. 144 p.

Novitskaya L. L., Galibina N. A., Nikerova K. M. Transport i zapasanie sakharov vo floeme Betula pendula Roth var. pendula i var. carelica [Sugar transport and storage in the phloem of Betula pendula Roth var. pendula and var. carelica]. Trudy KarNTs RAN [Trans. KarRC RAS]. 2015. No. 11. P. 35–47. doi: 10.17076/eb216

Polovnikova M. G., Voskresenskaya O. L. Activities of antioxidant system components and polyphenol oxidase in ontogeny of lawn grasses under megapolis conditions. Russ. J. Plant Physiol. 2008. Vol. 55, no. 5. P. 699–705. doi: 10.1134/S1021443708050154

Pradedova E. V., Isheeva O. D., Salyaev R. K. Superoxide

dismutase of plant cell vacuoles. Biochemistry (Moscow) Supplement. Series A: Membrane and Cell Biology. 2009. Vol. 3, no. 1. P. 24–32. doi: 10.1134/S1990747809010048

Pradedova E. V., Isheeva O. D., Salyaev R. K. Antioxidant

defense enzymes in cell vacuoles of red beet roots. Russ. J. Plant Physiol. 2011. Vol. 58, no. 1. P. 363–344. doi: 10.1134/S1021443711010110

Shelyakin M. A., Zakhozhii I. G., Golovko T. K. Ontogenetic aspects of plant respiration (by the example of Rubus chamaemorus L.). Russ. J. Plant Physiol. 2016. Vol. 63, no. 1. P. 92–100. doi:10.1134/S1021443716010167

Sin’kevich M. S., Deryabin A. N., Trunova T. I. Characteristics of oxidative stress in potato plants with modified carbohydrate metabolism. Russ. J. Plant Physiol. 2009. Vol. 56, no. 2. P. 168–174. doi: 10.1134/S1021443709020046

Zhukova L. A., Voskresenskaya O. L., Grosheva N. P.

Morfologicheskie i fiziologicheskie osobennosti ontogeneza

kalenduly lekarstvennoi (Calendula officinalis L.) v posevakh raznoi plotnosti [Morphological and physiological features of the ontogenesis of the pot marigold (Calendula officinalis L.) in crops of different density]. Ekologiya [Ecology]. 1996. Vol. 2. P. 104–110.

Alici E. H., Arabaci G. Determination of SOD, POD, PPO and CAT Enzyme Activities in Rumex obtusifolius L. ARRB. 2016. Vol. 11, no. 3. Р. 1–7. doi: 10.9734/ARRB/2016/29809

Barnett J., Jeronimidis G. Wood quality and its biological basis. Blackwell Publishing Ltd., 2003. 226 p.

Borges C. V., Minatel I. O., Gomez-Gomez H. A., Lima G. P. P. Medicinal Plants: Influence of Environmental Factors on the Content of Secondary Metabolites / Medicinal Plants and Environmental Challenges. Eds. M. Ghorbanpour, A. Varma, Cham: Springer, 2017. P. 259–278. doi: 10.1007/978-3-319-68717-9_15.

Burton S. G. Oxidizing enzymes as biocatalysts // Trends Biotechnol. 2003. Vol. 21, no. 12. P. 543–549. doi: 10.1016/j.tibtech.2003.10.006.

Chen Y., Zhang M., Chen T., Zhang Y., An L. The relationship between seasonal changes in anti-oxidative system and freezing tolerance in the leaves of evergreen woody plants of Sabina // S. Afr. J. Bot. 2006. Vol. 72, no. 2. P. 272–279. doi: org/10.1016/j.sajb.2005.09.004.

Couee I., Sulmon C., Gouesbet G., El Amrani A. Involvement of soluble sugars in reactive oxygen species balance and responses to oxidative stress in plants // J. Exp. Bot. 2006. Vol. 57, no. 3. P. 449–459. doi:10.1093/jxb/erj027.

Fernández-García N., Carvajal M., Olmos E. Graft union formation in tomato plants. Peroxidase and catalase involvement // Ann. Bot. 2004. Vol. 93, no. 1. P. 53–60. doi: 10.1093/aob/mch014.

Fukuda H. Xylogenesis: initiation, progression, and cell death // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. Vol. 47, no. 1. P. 299–325. doi: 10.1146/annurev.arplant.47.1.299.

Gaspar Th. The concept of cancer in in vitro plant cultures and the implication of habituation to hormones and hyperhydricity // Plant Tissue Cult. Biotechnol. 1995. Vol. 1. P. 126–136.

Hu M., Shi Z., Zhang Z., Zhang Y., Li H. Effects of exogenous glucose on seed germination and antioxidant capacity in wheat seedlings under salt stress // Plant Growth Regul. 2012. Vol. 68. P. 177–188. doi: 10.1007/s10725-012-9705-3.

Iqbal A., Wang T., Wu G., Tang W., Zhu C., Wang D., Li Yi., Wang H. Physiological and transcriptome analysis of heteromorphic leaves and hydrophilic roots in response to soil drying in desert Populus euphratica // Scientific Reports. 2017. Vol. 7, no. 1. Article number 12188. doi: 10.1038/s41598-017-12091-2.

Jakovljević D. Z., Stanković M. S., Topuzović M. D. Seasonal variability of Chelidonium majus L. secondary metabolites content and antioxidant activity // EXCLI J. 2013. Vol. 12. P. 260–268.

Laukkanen H., Haggman H., Kontunen-Soppela S., Hohtola A. Tissue browning of in vitro culture of Scots pine: role of peroxidase and polyphenol oxidase // Physiol. Plant. 1999. Vol. 106. P. 337–343. doi: 10.1034/j.1399-3054.1999.106312.x.

Novitskaya L. L., Kushnir F. V. The role of sucrose in regulation of trunk tissue development in Betula pendula Roth // J. Plant Growth Regul. 2006. Vol. 25, no. 1. P. 18–29. doi: 10.1007/s00344–004–0419–2.

Olson P. O., Varner J. E. Hydrogen peroxide and lignification // Plant J. 1993. Vol. 4, no. 5. P. 887–892. doi: 10.1046/j.1365-313X.1993.04050887.x.

Ros Barcelo A. Xylem parenchyma cells deliver the H2O2 necessary for lignification in differentiating xylem vessels // Planta. 2005. Vol. 220, no. 5. P. 747–756. doi: 10.1007/s00425-004-1394-3.

Savidge R. A. Xylogenesis, genetic and environmental regulation // JAWA J. 1996. Vol. 17, no. 3. P. 269–310. doi: 10.1163/22941932-90001580.

Srivastava O. P., Van Huystee R. B. An Interrelationship among Peroxidase, IAA Oxidase and Polyphenol Oxidase from Peanut Cells // Can. J. Bot. 1977. Vol. 55, no. 20. P. 2630–2635.

Thipyapong P., Hunt M. D., Steffens J. C. Antisense downregulation of polyphenol oxidase results in enhanced disease susceptibility // Planta. 2004. Vol. 220, no. 1. P. 105–107. doi: 10.1007/s00425-004-1330-6.

Toivonen P. M. A. Brummell D. A. Biochemical bases of appearance and texture changes in fresh-cut fruit and vegetables // Postharv. Biol. and Technol. 2008. Vol. 48, no. 1. P. 1–14. doi: 10.1016/j.postharvbio.2007.09.004.

Wellen K. E, Thompson C. B. Cellular metabolic stress: Considering how cells respond to nutrient excess // Mol. Cell. 2010. Vol. 40, no. 2. P. 323–332. doi:10.1016/j.molcel.2010.10.004.

Willekens H., Inzé D., Van Montagu M., Van Camp W. Catalases in plants // Molecular Breeding. 1995. Vol. 1, no. 3. P. 207–228. doi: 10.1007/BF02277422.




DOI: http://dx.doi.org/10.17076/eb787

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.


© Труды КарНЦ РАН, 2014-2018