Представлены результаты экспериментальных исследований по изменению гематологических параметров у песцов (Vulpes lagopus (Linnaeus, 1758), происходящих в первые сутки после смерти животных. Образцы крови вуалевых песцов (самцы в возрасте 7 месяцев, n=35) были взяты при жизни и и постмортально  спустя 1, 3, 6, 12 и 24 часа после убоя. Общепринятыми методами определяли общее количество эритроцитов, концентрацию гемоглобина, гематокрит, средний объем эритроцитов, средние содержание и концентрацию гемоглобина в эритроците, относительную ширину распределения эритроцитов по объёму, средний объем тромбоцитов, относительную ширину распределения тромбоцитов по объёму, тромбокрит, общее количество тромбоцитов, общее количество лейкоцитов, лейкоцитарную формулу, а также параметры эритроцитов (площадь, периметр, диаметр, толщину, индекс сферичности). Показано, что параметры крови, полученной при жизни  и в первые 3 часа после смерти, идентичны и не утрачивают значения для диагностики физиологического состояния животного, выявления патологий крови, установления влияния факторов окружающей среды. В постмортальной крови через 6 часов достоверно (р<0,05) снижается количество сегментоядерных нейтрофилов и за счет этого происходит сдвиг в лейкоцитарной формуле в сторону лимфоцитов. Количество палочкоядерных нейтрофилов и эозинофилов не изменяется. Через 6 часов после смерти встречаются единичные разрушенные нейтрофилы, а через 12 часов происходит их достоверное (р<0,05) снижение. Установлена идентичность параметров эритроцитов прижизненной и постмортальной крови песцов в первые 3 часа после смерти. Через 6 часов отмечены достоверные (р<0,05) отличия между прижизненными и постмортальными образцами в площади, периметре, диаметре и индексе сферичности эритроцита. При определении количества эритроцитов на одно поле зрения микроскопа и изучении параметров этих клеток в прижизненных и постмортальных образцах крови установлено, что в мазках из постмортальной крови сложнее найти пригодные поля зрения по причине их худшего качества для идентификации и морфометрии по сравнению с образцами от живых животных. Таким образом, представляется необходимым исследовать большее количество полей зрения для получения достоверных результатов. Полученные данные свидетельствуют, что периферическую постмортальную кровь, можно использовать как для изучения прижизненных показателей, так и для оценки посмертного интервала у млекопитающих.

Андреенко Г. В. Химия и физиология процесса. Клиническое применение фибринолизина: монография. М.: Медицина. 1967. 248 с.

Асташкина О. Г., Власов Н. В. Значение и возможности судебно-биохимических исследований при дифференциальной диагностике различных видов патологических состояний // Проблемы экспертизы в медицине. 2006. № 4 (24). C. 17–19.

Бакулев С. Н. Об изменениях крови в области трупных пятен при насильственной и скоропостижной смерти // Судебно-медицинская экспертиза. 1966. № 3. Р. 3–6.

Боягина О. Д., Сиганкова Т. В. Сравнительное исследование давности возникновения кровяных следов, образованных кровью живого человека и трупа. Материалы VI Международной студенческой научной конференции «Студенческий научный форум» Ржим доступа: https://scienceforum.ru/2014/article/2014002070">https://scienceforum.ru/2014/article/2014002070. Дата обращения: 27.04.2022.

Братчик А. М. Клинические проблемы фибринолиза. Киев. Здоровье, 1993. 344 с.

Ветшев П. С., Левчук А. Л., Алистратов Д. И. Хирургия на распутьи – к 90-летию статьи профессора СП Федорова // Эндоскопическая хирургия. 2018. № 24 (1). С. 3-9. doi.org/10.17116/endoskop20182413-9.

Гильманов А. Ж., Сашков В. А., Павлюшина В. А. Технология отбора аупопсийной крови для судебно-биохимических исследований // Судебная медицина 2017. № 3 (2). С. 47–49. doi.org/10.19048/2411-8729-2017-3-2-47-49.

Гланц Р. М. Нейрогуморальное направление в трансфузиологии. Под. ред. В. Н. Черниговского, О. И. Моисеева. Л.: Наука. 1983. 2391 с.

Ивантер Э. В., Коросов А. В. Элементарная биометрия. Петрозаводск. ПетрГУ. 2005. 104 с.

Кошурникова М. А., Домский И. А. Взятие, хранение и лабораторная диагностика биологического материала при добыче диких животных // Труды Карельского научного центра Российской академии наук. 2022. № 7. С. 75–84. doi.org/10.17076/eb1515.

Лазарева Е. Ю. История и пути развития метода переливания трупной крови в хирургии (к 90-летию открытия метода) // Вестник хирургии. 2020. № 179 (1). С. 105–109. doi.org/10.24884/0042-4625-2020-179-1-105-109.

Постановление Правительства РФ от 30 июня 1998 г. N 681 «Об утверждении перечня наркотических средств, психотропных веществ и их прекурсоров, подлежащих контролю в Российской Федерации» (с изменениями и дополнениями).

Приказ Министерства здравоохранения и социального развития РФ от 12 мая 2010 г. № 346н «Об утверждении Порядка организации и производства судебно-медицинских экспертиз в государственных судебно-экспертных учреждениях Российской Федерации».

Сергеева А. С., Пивоваров Ю. И., Бабушкина И. В., Дмитриева Л. А. Связь показателя сферичности эритроцитов с мембранными белками красных клеток крови у больных артериальной гипертензией // Российский кардиологический журнал. 2016. № 4 (132). С. 52–58.

Скудина М. Г., Русаков А. В. Переливание трупной крови без стабилизаторов // Советская хирургия. 1934. № 2-3. С. 194–198.

Тютиков С. Ф. Биологический мониторинг. Использование диких животных в биогеохимической индикации. М.: Юрайт. 2022. 230 с.

Хватов В. Б. Медико-биологические аспекты использования посмертной крови // Вестник АМН СССР. 1991. № 9. С. 18–24.

Хватов В. Б. Биологические свойства и использование компонентов посмертной крови // Неотложная медицинская помощь. 2013. № 3. Р. 64–70.

Хубутия М. Ш., Кабанова С. А., Богопольский П. П., Глянцев С. П., Гуляев В. А. Переливание кадаверной крови – выдающееся достижение российской трансплантологии и трансфузиологии (к 85-летию создания метода) // Трансплантология. 2015. № 4. С. 61–73.

Шамов В. Н., Костюков М. Х. К изучению гомопластики с трупа – переливание крови от трупа // Труды 3-го Всеукраинского съезда хирургов. 1929. Сентябрь 9-14. Днепропетровск. С. 184–188.

Arnemo J. M. Immobilization of free-ranging moose (Alces alces) with medetomidine-ketamine and remobilization with atipamezole // Rangifer. 1995. Vol. 15. no. 1. P. 19–25. doi.org/10.7557/2.15.1.1153.

Ashish T., Garg Shilpa G., Hitesh Ch. Estimation of post-mortem interval by evaluating autolytic changes in morphology of different white blood cells // International journal of medical toxicology & legal medicine. 2020. Vol. 23. no. 3-4. Р. 199–204. doi.org/10.5958/0974-4614.2020.00068.6.

Brooks J. W. Postmortem Changes in Animal Carcasses and Estimation of the Postmortem Interval // Veterinary Pathology. 2016. Vol. 53. no. 5. P. 929–940. doi.org/10.1177/0300985816629720.

Becker S. A., Kauffman M. J., Anderson S. H. Nutritonal condition of adult female Shiras moose in northwest Wyoming // Alces. 2010. Vol. 46. P. 151–166.

Miller A. L., Alina L. E., Oystein O., Arnemo J. M. Biochemical and hematologic reference values for free-ranging, chemically immobilized wild Norwegian Reindeer (Rangifer tarandus tarandus) during early winter // Journal of Wildlife Diseases. 2013. Vol. 49. no. 2. P. 221–228. doi.org/10.7589/2012-04-115.

Penttilä A., Laiho K. () Autolytic changes in blood cells of human cadavers. II. Morphological studies // Forensic Science International. 1981. Vol. 17. no. 2. Р. 121–132.

Pittner S., Bugelli V., Weitgasser K., Zissler A., Sanit S., Lutz L., Monticelli F., Campobasso C. P., Steinbacher P., Amendt J. A field study to evaluate PMI estimation methods for advanced decomposition stages // International Journal of Legal Medicine. 2020 Vol. 134. no. 4. P. 1361–1373. doi.org/10.1007/s00414-020-02278-0.

Rostal M. K., Evans A. L., Solberg E. J. Hematology and serum chemistry reference ranges of free-ranging moose in Norway // Journal of Wildlife Diseases. 2012. Vol. 48/ no. 3. P. 548–559. doi.org/10.7589/0090-3558-48.3.548.

Rousseau G., Bergerat N., Drevin G., Reynier P., Jousset N. Thanatobiochemistry: post mortem study of the vitreous humor for the diagnosis of diabetic ketoacidosis death // Annales de biologie Clinique. 2018. Vol. 76. no. 3. P. 245–250. doi.org/10.1684/abc.2018.1348.