Влияние продолжительности светового дня и мелатонина на морфофункциональную организацию лейкоцитов у сирийских хомяков (Mesocricetus auratus)
Аннотация
Проведено изучение влияния фотопериодических условий Северо-Западного ФО России (Республика Карелия, г. Петрозаводск) и гормона эпифиза мелатонина (100 мкг/животное) на состав лейкоцитарной формулы и морфометрические параметры лимфоцитов периферической крови у самок и самцов сирийского хомяка (Mesocricetus auratus). Животные были разделены на 2 группы: контроль (LD: 12 ч свет/12 ч темнота) и опыт (NL: снижение продолжительности световой фазы дня от 19:36/4:24 до 12/12, характерное для Республики Карелия в период с 25.06.18 до 25.09.18). Каждая группа была поделена на 2 подгруппы: хомяки 1-й подгруппы получали питьевую воду без мелатонина (LD, NL), 2-й - на ночь мелатонин (100 мкг/животное) (LDmel, NLmel). В результате проведенного эксперимента показано, что естественный для северо-запада фотопериод лишь незначительно изменял большинство параметров лейкоцитарной формулы самок и самцов. Влияния продолжительности светового дня на общее содержание лейкоцитов у самок выявлено не было, но обнаружено снижение количества палочкоядерных нейтрофилов при сокращении фотопериода. Как у самок, так и у самцов в NLmel выявлено увеличение соотношения нейтрофилов к лимфоцитам по сравнению LD и NL. Морфометрический анализ лимфоцитов у самок и самцов показал, что уменьшение продолжительности светового дня и мелатонин оказывают влияние на площадь лимфоцитов и ядерно-цитоплазматическое соотношение (ЯЦО): в группах NL, LDmel и NLmel площадь клетки увеличивалась, при этом ЯЦО сокращалось со снижением продолжительности светового дня. Отмечаемые изменения изученных показателей могут быть опосредованы влиянием эндокринных желез, в частности тимуса, надпочечников и гонад, которые участвуют в регуляции лейкопоэза и клеточного метаболизма.
Ключевые слова
Полный текст:
PDFЛитература
Анисимов В.Н., Анисимов И.А., Виноградова А.В., Букалев и др. Световой десинхроноз и риск злокачественных новообразований у лабораторных животных: состояние проблемы // Вопр. онкологии. 2014. Т. 60. № 2. С. 15-27.
Бородин Ю.И., Григорьев В.Н., Летягин А.Ю. и др. Функциональная морфология иммунной системы. / Новосибирск: Наука, 1987. 236 с.
Ватазин А.В., Василенко И.А., Валов А.Л., Метелин В.Б., Круглов Е.Е., Цалман А.Я. Витальная компьютерная морфометрия лимфоцитов в диагностике острого отторжения почечного аллотрансплантата // Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2009. Т. 11. № 4. С. 18-25.
Ветеринарная лабораторная медицина: интерпретация и диагностика / Денни Мейер, Джон Харви ; под ред. Ю. М. Кеда ; пер. с англ. Л. А. Певницкого. М.: Софион, 2007. С. 458.
Гаркави Л.Х., Квакина Е.Б., Уколова М.А. Адаптационные реакции и резистентность организма. // Ростов н/Д: Изд-во Ростовск. ун-та, 1990.
Давыдкин И.Л., Фёдорова О.И., Захарова Н.О., Селезнёв А.В. Компьютерная морфометрия лимфоцитов периферической крови у больных пневмонией различного возраста // Известия Самарского научного центра РАН. 2010. №1-7.
Казначеев В.П., Труфакин В.А., Шурлыгина А.В. и др. Суточные колебания клеточного состава периферической крови у мышей разных генотипов // Физиол. журн. СССР. 1978. Т. 64, № 11. С. 1575–1580.
Кост Е.А. Справочник по клиническим лабораторным методам исследования / Под ред. М.: Медицина, 1975.
Новодержкина Ю.К., Караштин В.В., Моруков Б.В. и др. Морфометрические показатели лимфоцитов периферической крови в условиях 120-суточной антиортостатической гипокинезии // Клиническая лабораторная диагностика. 1996. №1. С. 40-41.
Слепушкин В.Д., Пашинский В.Г., Эпифиз и адаптация организма. / Томск: Изд-во Томск. ун-та, 1982.
Узенбаева Л.Б., Виноградова И.А., Голубева А.Г. и др. Влияние мелатонина и эпиталона на состав лейкоцитарной формулы и активность щелочной фосфатазы лейкоцитов крови крыс при разных режимах освещения в онтогенезе // Успехи геронтологии. 2008. Т. 21. № 3. С. 394-401.
Узенбаева Л.Б., Виноградова И.А., Кижина А.Г. и др. Влияние мелатонина на соотношение нейтрофилов и лимфоцитов в крови млекопитающих зависит от возраста животных // Успехи геронтологии. 2012. Т. 25. № 3. С. 409-414.
Чазов Е. И., Исаченков В. А. Эпифиз: место и роль в системе нейроэндокринной регуляции. М.: Наука, 1974. С. 121–155.
Antonova E.P., Ilyukha V.A., Kalinina S.N. Effect of Northwest Russia’s Photoperiodic Conditions and Exogenous Melatonin on Physiological and Biochemical Parameters in Syrian Hamsters (Mesocricetus auratus) // Moscow University Biological Sciences Bulletin, 2020. Vol. 75, no. 3. P. 117-124. doi: 10.3103/S0096392520030013.
Auchtung T.L., Kendall P.E., Salak-Johnson J.L., McFadden T.B., Dahl G.E. Photoperiod and bromocriptine treatment effects on expression of prolactin receptor mRNA in bovine liver, mammary gland and peripheral blood lymphocytes // J. Endocrinol. 2003. Vol. 179, no. 3. P. 347-56. doi: 10.1677/joe.0.1790347.
Borniger J.C., Nelson R.J., Photoperiodic regulation of behavior: Peromyscus as a model system // Semin Cell Dev. Biol. 2017. Vol. 61, P. 82-91. doi: 10.1016/j.semcdb.2016.06.015.
Chayama Y., Ando L., Tamura Y., Miura M., Yamaguchi Y. Decreases in body temperature and body mass constitute pre-hibernation remodelling in the Syrian golden hamster, a facultative mammalian hibernator // R. Soc. Open Sci. 2016. Vol. 3, no. 4: 160002.
Cipolla-Neto J., Amaral F.G., Afeche S.C., Tan D.X., Reiter R.J. Melatonin, energy metabolism, and obesity: a review // J. Pineal. Res. 2014. Vol. 56, no. 4. P. 371–381 doi: 10.1111/jpi.12137.
Gross W.B., Siegel H.S. Evaluation of the heterophil to lymphocyte ratio as a measure of stress in chickens // Avian. Dis. 1983. Vol. 27, P. 972–979.
Heaton P.R., Blount D.G., Mann S.J. et al. Assessing age-related changes in peripheral blood leukocite phenotypes in domestic shorthaired cats using flow cytometry // J. Nutr. 2002. Vol. 132, P. 1607S–1609S.
Kuznetsova E.V., Feoktistova N.Y., Naidenko S.V., Surov A.V., Tikhonova N.B. Seasonal changes in blood cells and biochemical parameters in the mongolian hamster (Allocricetulus curtatus) // Biology Bulletin. 2016. Vol. 43. no 4. P. 344-349.
Nelson R.J. Seasonal immune function and sickness responses // Trends Immunol. 2004. Vol. 25, P. 187–192.
Reiter R.J. The melatonin message: Duration versus coincidence hypotheses // Life Sci. 1987. Vol. 40, no.22. P. 2119–2131.
Stevenson T.J, Prendergast BJ. Photoperiodic time measurement and seasonal immunological plasticity // Front. Neuroendocrinol. 2015. Vol. 37, P.76-88. doi: 10.1016/j.yfrne.2014.10.002.
Tabuchi T., Shimazaki J., Satani T. et al. The perioperative granulocyte/lymphocyte ratio is a clinically relevant marker of surgical stress in patients with colorectal cancer // Cytokine. 2011. Vol. 53, P. 243–248.
Terrón M.P., Delgado-Adámez J., Pariente J.A., Barriga C., Paredes S.D., Rodríguez A.B. Melatonin reduces body weight gain and increases nocturnal activity in male Wistar rats // Physiol. Behav. 2013. Vol. 118, P. 8–13.
Vinogradova I., Anisimov V. Melatonin prevents the development of the metabolic syndrome in male rats exposed to different light/dark regimens // Biogerontology. 2013. no. 14. P. 401–409.
Walton J.C., Weil Z.M., Nelson R.J. Influence of photoperiod on hormones, behavior, and immune function // Front. Neuroendocrinol. 2011. Vol.32, no.3. P. 303-319. doi:10.1016/j.yfrne.2010.12.003.
Wen J.C., Dhabhar F.S., Prendergast B.J. Pineal-dependent and -independent effects of photoperiod on immune function in Siberian hamsters (Phodopus sungorus) // Horm. Behav. 2007. Vol.51, no.1. P.31-39. doi:10.1016/j.yhbeh.2006.08.001.
Xu D.L., Hu X.K. Season and sex have different effects on hematology and cytokines in striped hamsters (Cricetulus barabensis) // J. Comp. Physiol. B. 2020. Vol. 190, no. 1. P. 87-100. doi: 10.1007/s00360-019-01246-4.
Xu X., Liu X., Ma S., Xu Y., Xu Y., Guo X., Li D. Association of Melatonin Production with Seasonal Changes, Low Temperature, and Immuno-Responses in Hamsters // Molecules. 2018. Vol. 23, no.3. P. 703. https://doi.org/10.3390/molecules23030703.
Zhou S., Cagampang F.R., Stirland J.A., Loudon A.S., Hopkins S.J. Different photoperiods affect proliferation of lymphocytes but not expression of cellular, humoral, or innate immunity in hamsters // J. Biol. Rhythms. 2002. Vol. 17. P. 392–405.
REFERENCES in ENGLISH
Anisimov V.N., Anisimov I.A., Vinogradova A.V., Bukalev i dr. Svetovoj desinhronoz i risk zlokachestvennyh novoobrazovanij u laboratornyh zhivotnyh: sostoyanie problemy //. Vopr. onkologii. 2014. Vol. 60, no. 2. P. 15-27.
Borodin YU.I., Grigor'ev V.N., Letyagin A.YU. i dr. Funkcional'naya morfologiya immunnoj sistemy. / Novosibirsk: Nauka, 1987. P. 236.
Vatazin A.V., Vasilenko I.A., Valov A.L., Metelin V.B., Kruglov E.E., Calman A.YA. Vital'naya komp'yuternaya morfometriya limfocitov v diagnostike ostrogo ottorzheniya pochechnogo allotransplantata // Vestnik transplantologii i iskusstvennyh organov. 2009. Vol. 11, no. 4. P. 18-25.
Veterinarnaya laboratornaya medicina: interpretaciya i diagnostika / Denni Mejer, Dzhon Harvi ; pod red. YU.M. Keda ; per. s angl. L.A. Pevnickogo. M.: Sofion, 2007. P. 458.
Garkavi L.H., Kvakina E.B., Ukolova M.A. Adaptacionnye reakcii i rezistentnost' organizma. // Rostov n/D: Izd-vo Rostovsk. un-ta, 1990.
Davydkin I.L., Fyodorova O.I., Zaharova N.O., Seleznyov A.V. Komp'yuternaya morfometriya limfocitov perifericheskoj krovi u bol'nyh pnevmoniej razlichnogo vozrasta // Izvestiya Samarskogo nauchnogo centra RAN. 2010. no. 1-7.
Kaznacheev V.P., Trufakin V.A., SHurlygina A.V. i dr. Sutochnye kolebaniya kletochnogo sostava perifericheskoj krovi u myshej raznyh genotipov // Fiziol. zhurn. SSSR. 1978. Vol. 64, no. 11. P. 1575–1580.
Kost E.A. Spravochnik po klinicheskim laboratornym metodam issledovaniya / Pod red. M.: Medicina, 1975.
Novoderzhkina YU.K., Karashtin V.V., Morukov B.V. i dr. Morfometricheskie pokazateli limfocitov perifericheskoj krovi v usloviyah 120-sutochnoj antiortostaticheskoj gipokinezii // Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 1996. no. 1. P. 40-41.
Slepushkin V.D., Pashinskij V.G. Epifiz i adaptaciya organizma. / Tomsk: Izd-vo Tomsk. un-ta, 1982.
Uzenbaeva L.B., Vinogradova I.A., Golubeva A.G. i dr. Vliyanie melatonina i epitalona na sostav lejkocitarnoj formuly i aktivnost' shchelochnoj fosfatazy lejkocitov krovi krys pri raznyh rezhimah osveshcheniya v ontogeneze // Uspekhi gerontologii. 2008. Vol. 21, no. 3. P. 394-401.
Uzenbaeva L.B., Vinogradova I.A., Kizhina A.G. i dr. Vliyanie melatonina na sootnoshenie nejtrofilov i limfocitov v krovi mlekopitayushchih zavisit ot vozrasta zhivotnyh // Uspekhi gerontologii. 2012. Vol. 25, no. 3. P. 409-414.
CHazov E.I., Isachenkov V.A. Epifiz: mesto i rol' v sisteme nejroendokrinnoj regulyacii. M.: Nauka, 1974. P. 121–155.
Antonova E.P., Ilyukha V.A., Kalinina S.N. Effect of Northwest Russia’s Photoperiodic Conditions and Exogenous Melatonin on Physiological and Biochemical Parameters in Syrian Hamsters (Mesocricetus auratus) // Moscow University Biological Sciences Bulletin, 2020. Vol. 75, no. 3. P. 117-124. doi: 10.3103/S0096392520030013.
Auchtung T.L., Kendall P.E., Salak-Johnson J.L., McFadden T.B., Dahl G.E. Photoperiod and bromocriptine treatment effects on expression of prolactin receptor mRNA in bovine liver, mammary gland and peripheral blood lymphocytes // J. Endocrinol. 2003. Vol. 179, no. 3. P. 347-56. doi: 10.1677/joe.0.1790347.
Borniger J.C., Nelson R.J., Photoperiodic regulation of behavior: Peromyscus as a model system // Semin Cell Dev. Biol. 2017. Vol. 61, P. 82-91. doi: 10.1016/j.semcdb.2016.06.015.
Chayama Y., Ando L., Tamura Y., Miura M., Yamaguchi Y. Decreases in body temperature and body mass constitute pre-hibernation remodelling in the Syrian golden hamster, a facultative mammalian hibernator // R. Soc. Open Sci. 2016. Vol. 3, no. 4: 160002.
Cipolla-Neto J., Amaral F.G., Afeche S.C., Tan D.X., Reiter R.J. Melatonin, energy metabolism, and obesity: a review // J. Pineal. Res. 2014. Vol. 56, no. 4. P. 371–381 doi: 10.1111/jpi.12137.
Gross W.B., Siegel H.S. Evaluation of the heterophil to lymphocyte ratio as a measure of stress in chickens // Avian. Dis. 1983. Vol. 27, P. 972–979.
Heaton P.R., Blount D.G., Mann S.J. et al. Assessing age-related changes in peripheral blood leukocite phenotypes in domestic shorthaired cats using flow cytometry // J. Nutr. 2002. Vol. 132, P. 1607S–1609S.
Kuznetsova E.V., Feoktistova N.Y., Naidenko S.V., Surov A.V., Tikhonova N.B. Seasonal changes in blood cells and biochemical parameters in the mongolian hamster (Allocricetulus curtatus) // Biology Bulletin. 2016. Vol. 43. no 4. P. 344-349.
Nelson R.J. Seasonal immune function and sickness responses // Trends Immunol. 2004. Vol. 25, P. 187–192.
Reiter R.J. The melatonin message: Duration versus coincidence hypotheses // Life Sci. 1987. Vol. 40, no.22. P. 2119–2131.
Stevenson T.J, Prendergast BJ. Photoperiodic time measurement and seasonal immunological plasticity // Front. Neuroendocrinol. 2015. Vol. 37, P.76-88. doi: 10.1016/j.yfrne.2014.10.002.
Tabuchi T., Shimazaki J., Satani T. et al. The perioperative granulocyte/lymphocyte ratio is a clinically relevant marker of surgical stress in patients with colorectal cancer // Cytokine. 2011. Vol. 53, P. 243–248.
Terrón M.P., Delgado-Adámez J., Pariente J.A., Barriga C., Paredes S.D., Rodríguez A.B. Melatonin reduces body weight gain and increases nocturnal activity in male Wistar rats // Physiol. Behav. 2013. Vol. 118, P. 8–13.
Vinogradova I., Anisimov V. Melatonin prevents the development of the metabolic syndrome in male rats exposed to different light/dark regimens // Biogerontology. 2013. no. 14. P. 401–409.
Walton J.C., Weil Z.M., Nelson R.J. Influence of photoperiod on hormones, behavior, and immune function // Front. Neuroendocrinol. 2011. Vol.32, no.3. P. 303-319. doi:10.1016/j.yfrne.2010.12.003.
Wen J.C., Dhabhar F.S., Prendergast B.J. Pineal-dependent and -independent effects of photoperiod on immune function in Siberian hamsters (Phodopus sungorus) // Horm. Behav. 2007. Vol.51, no.1. P.31-39. doi:10.1016/j.yhbeh.2006.08.001.
Xu D.L., Hu X.K. Season and sex have different effects on hematology and cytokines in striped hamsters (Cricetulus barabensis) // J. Comp. Physiol. B. 2020. Vol. 190, no. 1. P. 87-100. doi: 10.1007/s00360-019-01246-4.
Xu X., Liu X., Ma S., Xu Y., Xu Y., Guo X., Li D. Association of Melatonin Production with Seasonal Changes, Low Temperature, and Immuno-Responses in Hamsters // Molecules. 2018. Vol. 23, no.3. P. 703. https://doi.org/10.3390/molecules23030703.
Zhou S., Cagampang F.R., Stirland J.A., Loudon A.S., Hopkins S.J. Different photoperiods affect proliferation of lymphocytes but not expression of cellular, humoral, or innate immunity in hamsters // J. Biol. Rhythms. 2002. Vol. 17. P. 392–405.
DOI: http://dx.doi.org/10.17076/eb1496
Ссылки
- На текущий момент ссылки отсутствуют.
© Труды КарНЦ РАН, 2014-2019